givotinki.ru. Рыба бестер: описание, особенности и виды

1 Как произошло скрещивание бестера

2 Что получилось в результате

3 Внешние особенности и виды бестера

3.1 Бурцевский вид

3.2 Стерляжий бестер

3.3 Белужий бестер

4 Разведение бестера

5 Рыбалка на бестера

6 Бестер в кулинарии

7 Видео о гибридах осетров и бестерах

Наша матушка-природа создала много чего удивительного, к примеру, хоть ту же белугу, по праву относящуюся к крупнейшим из осетровых. Это огромных размеров, древнейшая реликтовая царь-рыба с архаичной внешностью, живущая в морях Европы и нерестящаяся в крупных реках континента.

Но главное – непостижимы её габариты. Ранее для белуг пятиметровая длина (и даже более того) считалась вполне обычным явлением. Живут громадины сто лет. И всё это время растут, достигая иногда к концу жизни веса почти в полторы, а то и две тонны. А рыбацких баек о встречах с подобными экземплярами известно немало.

Также ходят слухи, что в желудках белуг нередко находили водоплавающих птиц, всевозможную немаленькую морскую живность и даже детёнышей тюленей. Не трудно поверить в это, надо же как-то этим тварям питать свою непостижимую массу.

Только вот людоедством белуги никогда не занимались. Наоборот, люди с удовольствием кушали их. Хотя иногда кажется, что проглотить человека для царь-рыбины несложно. Правда, разумеется, никак невозможно разжевать и переварить.

И уж точно в желудке белуги как-нибудь поместится другая осетровая рыба – полуметровая стерлядь, в среднем не превышающая по массе 2 кг. К сожалению, мяса, поймав такую добычу, не получишь слишком много, зато славится оно нежным вкусом. А также людям хорошо известно, что мечет стерлядь икру.

Спасибо матушке-природе, что произвела на свет такую чудо-рыбу, убедив нас в очередной раз в своей щедрости и великих возможностях. Нам точно известно: что может создать природа. Но также понятно и то, что она сотворить не в состоянии: бестера – рыбу весьма уникальную, которая является детёнышем массивной белуги и маленькой стерляди.

Ведь даже, не считая понятной разницы в габаритах, нерестятся «папа» и «мама» в разное время, что совершенно сводит на нет возможности их скрещивания. А вот люди сумели создать подобный осетровый гибрид. О данной рыбе, выведенной исключительно искусственным путём, чьё имя составлено из первых слогов названий родителей, то есть «бе» и «стер», будет наш дальнейший рассказ.

Белуга намного крупней стерляди, поэтому в успех скрещивания долго не верили

Как произошло скрещивание бестера

Жил в середине прошлого столетия профессор Николюкин Н. И., который очень интересовался гибридизацией рыб. И хотя многие в те времена говорили о том, что при скрещивании различных родов осетровых потомство просто не может быть плодовитым, он всё равно верил в успех науки и даже написал по этому поводу диссертацию.

И оказался прав. Ведь, как выяснилось позже, все осетровые (помимо, как ни странно, самих осетров), независимо от того: большие они или маленькие, наделены одинаковым числом хромосом. И этот неожиданный генетический парадокс позволил свершиться невозможному.

В 1952 году сотрудники упомянутого селекционера, разделявшие его убеждения, решились на неожиданный смелый эксперимент. Хотя в те времена наука ещё не дошла до того, чтобы уметь считать хромосомы, и никакой уверенности в успехе опыта они не имели. В лаборатории близ города Саратова, используя молоки от стерляди, они оплодотворили их содержимым белужью икру.

Экземпляры осетровых для селекции попросту отлавливались рыбаками. А чтобы генетический материал быстро доходил до нужной степени зрелости, экспериментируемым рыбам вводили при помощи укола в спинную область специальные гормональные инъекции. Шустрых мальков, появившихся вскоре, поместили в саратовские пруды Тепловского рыбопитомника. И стали ожидать результатов.

Николюкин Н. И, советский ихтиолог, доктор биологических наук,  автор новой породы рыб бестер

Что получилось в результате

Не сразу всё было гладко, ведь для достижения желаемого и получения полностью жизнеспособных и плодовитых гибридов потребовалось целых девять лет. К примеру, поначалу женские экспериментальные особи не вырабатывали нужное количество желтка – вещества крайне необходимого для питания и развития из икры мальков. Но в конце концов после переселения рыб в южные широты проблема, к общей радости, разрешилась.

А в результате прилагаемых усилий появилась на свет замечательная рыба бестер. Как оказалось, она умудрилась забрать всё самое лучшее от обоих родителей, то есть белуги и стерляди. В качестве иллюстрации достоинств гибрида остановимся на некоторых сведениях, касающихся данных трёх рыб.

• Развиваясь из мальков, белуги очень быстро увеличиваются в размерах и набирают массу. Но поздно становятся половозрелыми. Просто, имея в запасе целый век жизни, не торопятся продолжить свой род, ведь ещё успеют. Но их неспешное развитие очень неудобно для людей. Хотя самки таких осетровых плодовиты, но серьёзно производить икру начинают обычно только по прошествии 20-ти лет с момента появления их на свет.
• Со стерлядями всё с точностью до наоборот. Растут они медленно, но самки примерно к 7 годам созревают для продолжения рода, а вот мужские особи и того раньше. Оно и понятно, ведь данным мелким осетровым нужно торопиться с развитием и воспроизводством: ведь век их недолог, он составляет порядка 30 лет.
• Бестеры славятся и быстрым ростом, и половым развитием. Где-то к трём годам масса молоди уже равна весу взрослых стерлядей, то есть составляет приблизительно 2 кг. А самки-бестеры, набрав где-то килограмм 15, уже способны производить чёрную икру в количестве 3 кг.

В наши дни гибридов по праву объявляют великим достижением советской селекции. Как выяснилось уже позже, в условиях резкого вымирания осетровых в природе и, как следствие, сокращения рыбного промысла, эти искусственно выведенные рыбы стали спасением в безвыходной ситуации и решением многих проблем.

Название бестеру дали от родительской БЕлуги и СТЕРляди

Бестеры жизнеспособны, активны, плодовиты, но самое главное – удобны для искусственного разведения и коммерческого использования. В настоящее время подобным бизнесом занимаются во многих странах Европы и Азии.

Среди других положительных качеств таких рыб можно назвать следующие:

• к температурным показателям бестеры не слишком требовательны, также как и степень не солёности или солёности воды (в определённых пределах, конечно) на их самочувствие не слишком влияет;
• такие питомцы при разведении их в рыбных хозяйствах или на морских плантациях вполне довольствуются искусственными кормами и быстро к ним привыкают;
• они легко приживаются в водохранилищах и даже прудах, так как, в отличие от многих осетровых, созданных природой, не пускаются для нереста в далёкие путешествия, а живут себе оседло.

Будучи выпушенными на волю, бестеры прекрасно осваиваются в естественных водоёмах, что способствует восстановлению в природе популяции осетровых рыб, хотя процессы воспроизводства у них нетипичные. И ещё, здесь нужно соблюдать осторожность и не переусердствовать, чтобы не нарушить генетическую чистоту уже существующих в природе сородичей. Всё-таки осетровые – это древнейшие водные существа планеты, можно сказать – живые реликты. Хотелось бы их сохранить для будущего в неизменном, первозданном виде.

Осетровые, это древнейшие представители рыб

Внешние особенности и виды бестера

То, что дети во многом копируют родителей, вряд ли кого-либо может удивить. И даже рыбы здесь не становятся исключением. Естественно, как и их прямые предки, принадлежат бестеры к Осетровым и внешне получились похожими на членов данного семейства. Из характерных черт облика этих подвижных и пластичных рыб-гибридов, чья длина практически соответствует среднему человеческому росту, а масса может доходит до 30 кг, назовём следующие.

• Ярким доказательством принадлежности к благородной древней породе является отсутствие чешуи – приметы, которая должна быть вроде бы свойственна всем рыбам. Но вместо неё тело бестеров покрывают, так называемые, жучки – костяные защитные образования, характерные для осетровых, по-другому щитки или платины, расположенные в пять рядов.
• Удивительное по форме рыло этих существ не закруглено, как у представителей некоторых других семейств, а сильно вытянуто, как у типичных осетровых, уплощено и слегка изогнуто вверх. Со стороны – прямо эдакая-такая «носатая» рыба (хотя нос, конечно, здесь не причём, ведь дышат эти создания жабрами).
• Есть у осетровых и некоторое подобие бородки. Правда называются эти отростки усиками, и расположены они под рылом. Это органы осязания. С помощью них такие придонные рыбы выискивают для себя корм – мелких беспозвоночных и других водных существ. И наши гибриды получили по наследству такие же усики в количестве двух пар, как это и положено.
• Полулунный рот белуги, соединившись генетически со стерляжьей поперечной ротовой щелью, составил у бестера нечто среднее между одной и другой формой рта.
• Плавники у гибридов веерообразные, расходящиеся тонкими лучами-косточками, как и у прочих осетровых, потому-то представители семейства и относятся к классу Лучепёрых.

Окраска бестеров не одинакова. Из гамм здесь преобладают серые, коричневые и чёрные в различных оттенках и сочетаниях. Но верх тела почти всегда значительно темнее низа, и такие цветовые отличия, как правило, сильно бросаются в глаза.

Бурцевский вид

Пока нами был рассмотрен лишь только один из возможных гибридов – потомков почтенной долгожительницы белуги и самой скромненькой по габаритам в своём семействе, но замечательной стерляди. Данный вид был выведен первым и получил название Бурцевского. Помимо научного, он имел огромное хозяйственное и коммерческое значение.

Икра рыбы бестер мало чем отличается от родительской. Вот для её производства, а также молок, и выращивается обычно данная разновидность. Самки бывают готовы к метанию примерно к 8 годам, так как полностью созревают для этого по всем показателям. Но указанные сроки для самцов сокращаются вдвое, ведь свои мужские функции они готовы выполнить уже к 4 годам. Однако, отвлечёмся пока на время от первого удачного опыта и рассмотрим другие гибриды, потому что они существуют.

Стерляжий бестер

Соединить между собой замечательные черты стерляди и белуги можно и совершенно другим способом. То есть повторить уже описанный эксперимент, но только сделать всё с точностью до наоборот: взять содержимое молок белуги и оплодотворит ей стерляжью икру. И подобный эксперимент был проведён в 1958 году всё тем же коллективом советских учёных-селекционеров. А произошло это в уже известном нам Саратовском рыбном хозяйстве с продолжением опытов в питомниках Ростовской области.

В результате творческой работы была выведена принципиально новая искусственная разновидность, получившая название Аксайской. Показатели таких осетровых гибридов оказались не менее, а даже более потрясающими. Такие рыбы отличались значительным весом и размерами. Формирование женских особей завершалось уже к трём годам, а мужских – к двум, что весьма облегчало хлопоты по разведению такой породы, ведь получать икру от обитателей питомников можно было в короткие сроки.

Белужий бестер

Продолжая эксперименты по улучшению гибридов, советские селекционеры решили на следующем этапе создать осетровый вид по своим свойствам более приближенный к белуге. Но, конечно, они хотели, чтобы он обладал определёнными, полезными для хозяйственно разведения качествами. А потому икра белуги была оплодотворена семенным материалом бестера. В результате получился вторичный очень крупный гибрид, как и было задумано.

И хотя окончательное формирование таких рыб наступало поздно и развитие шло медленно, зато зрелые особи отличались завидной плодовитостью. К примеру, лишь одна самка этого вида, получившего название Внировского, могла производить до полумиллиона икринок. Это почти в два раза больше, чем мечет обыкновенный бестер, и почти в пять раз превышает возможности аксайской породы.

Разведение бестера

Рассматриваемые нами гибриды осетровых достаточно неприхотливы и нетребовательны к качеству воды, хотя лучше всего им подходит слегка солоноватая среда. Меньше всего с ними проблем и легче они приживаются в южных областях страны, ведь самая желанная для них температура – чуть больше 20°С. Но самое важное, что необходимо при разведении рыбы бестер, это хорошо её кормить. Как и родительские формы, данные существа являются хищниками.

В меню их входят разнообразные типы мелкой водной и полуводной фауны. К пригодным кормам относится всё, начиная от некрупной рыбы, и кончая моллюсками в их разнообразных формах, рачками, червями и даже такой мелочью, как личинками размножающихся в воде насекомых. А потому удобным местом для размещения гибридов является частный пруд, который бестеры сами по себе очистят от всех малопригодных организмов, заодно и насытившись.

Приблизительная площадь его должна составлять порядка 3000 м². На указанной водной территории спокойно можно разметить около 2 тысяч экземпляров замечательных гибридов годовалого возраста. Если естественных кормовых запасов не хватает, то подойдут и искусственные, к примеру, сухие корма, но не все из них, а только крупные и тонущие.

Здесь просто нужно учитывать особенности осетровых. Это донные создания, то есть предпочитают держатся у дна водоёмов, там же и привыкли питаться. Также очень кстати при взращивании окажутся рыбные отходы в любом их виде: как свежие, так и замороженные.

Будучи искусственно выведенными видами, появившимися на свет от генетического соединения двух совершенно непохожих друг на друга разновидностей осетровых, данные гибриды, хоть и не стали бесплодными, как это предполагалось, однако, во многом оказались непохожими на созданных природой сородичей.

А потому нерест бестера – это не совсем естественный процесс, обладающий множеством особенностей. Более того, самостоятельно эти рыбы вообще не могут размножаться. И потому весной заводчики их отлавливают для сбора икры и содержимого молок. То и другое соединяют в тазах на несколько минут, потом сцеживают воду, промывают и производят инкубацию. Появившихся мальков выращивают в бассейнах, потом выпускают.

Для размножения бестерам необходима помощь человека

Рыбалка на бестера

Для того, чтобы понять значение селекционной работы, проведённой в прошлом веке советскими учёными, нужно только вообразить себе типичных представителей семейства Осетровых. Это древнейшие водные существа, чьи особенности строения и поведения не менялись сотнями миллионов лет. Белуги, к примеру, издревле жили в морях, но, когда наступало их время, отправлялись на нерест, поднимаясь по устьям крупных рек, чтобы продолжить свой род.

А случалось это нечасто, всего лишь несколько раз за их длинную жизнь. Таким медленно развивающимся, консервативным по своей сущности рыбам трудно приспособиться к чему-либо иному, ибо разрушить установленный природой порядок они не в состоянии. А потому белугу или даже некрупную пресноводную стерлядь невозможно представить быстро прижившимися в массовом порядке в каком-нибудь пруду.

Но выведенные гибриды осетровых, помимо того, как культивироваться в самых разнообразных, больших и маленьких, разного направления рыбных хозяйствах; выращиваться в промышленных и декоративных целях; спокойно могут разводиться в незначительных по размерам водоёмах и прудах для рыбалки. Кстати, ловля, выпущенных некогда на свободу в незрелом возрасте, гибридов осетровых производится практически в любое время дня и ночи без всякой прикормки.

Для этого используются обычные донные и поплавочные удочки, а также блесна. В качестве наживки подойдут ручейники, личинки мясной мухи и короеда. Такой замечательный отдых не только гарантированно подарит незабываемые эмоции, но и в скором времени порадует прекрасным вкусом свежеприготовленной рыбы.

Вот только жаль, что разводятся бестеры в России не слишком активно. Наверное, здесь дело в недостатке информации о них, а также, возможно, в трудностях репродуктивной функции искусственных рыб. Также остаётся загадкой: почему советские учёные, несмотря на свой грандиозный успех, помимо уже нам известных, не выводили других гибридов.

Бестер в кулинарии

Как выяснилось со временем, мясо бестера не только реально вкуснее, чем у родительских видов, оно к тому же ещё полезней и питательней. И это несмотря на то, что все осетровые рыбы из покон века считались деликатесом и невероятной вкуснятиной. Мясо гибридов обладает ещё одним интересным свойством: жир в нём распределён равномерно, а не просто находится в хребтовой области тела, как у родительских видов и прочих сородичей.

А потому при варке его и приготовлении балыка происходит ряд процессов, которые в итоге награждают дополнительной аппетитностью получившиеся витаминные смачные блюда. К высококалорийным продуктам такое мясо не относится, но и диетическим его назвать нельзя. Кроме уже перечисленного, его не только жарят, но и запекают, и тушат.

Раньше, когда ещё и в помине не было бестеров, а осетровых рыб легко можно было выловить во всех Российских морях и реках, их икру ели не только по праздникам (как мы сейчас), но и в будни. Чёрная икра гибридных разновидностей не хуже, чем у других прославленных осетровых, но больше похожа на белужью.

Вкус её маслянистый, деликатный, нежно-ореховый, утончённый. Она вполне может считаться первоклассной холодной закуской. А потому, если гибриды осетровых станут в будущем более активно разводить, возможно, замечательная натуральная чёрная икра вновь станет одним из самых доступных лакомств.

Как и все осетровые, бестеры являются производителями черной икры

Не справедливо также обойти вниманием другой продукт, получаемый от бестеров – это молоки, тоже невероятно вкусные и полезные. В традиционной азиатской кухне их даже едят сырыми вот уже тысячи лет. Помимо огромного количества полезных элементов, всяких ценных жиров и белков, они также, как доказано, содержат вещества, способствующие омолаживанию. Выглядят, правда, молоки не особенно привлекательно.

И может быть именно потому для большинства европейцев они немного сродни чему-то отвратительному, типа жаренных тараканов. Однако, молоки бестеров можно зажаривать с сухарями, тушить в сметано-молочном соусе, как и прочие вкусности, запекать в духовке, использовать в салатах вместо рыбы, а также делать с ними многое другое.

Видео о гибридах осетров и бестерах

ХАРАКТЕРИСТИКА ТРУДНОИДЕНТИФИЦИРУЕМЫХ ПРЕДСТАВИТЕЛЕЙ РОДА ACIPENSER РЕКИ ИРТЫШ ФГБОУ ВО «АГТУ» — Эдиторум

Введение Представители осетровых отнесены в отряд осетрообразных рыб, который в свою очередь включает семейство — осетровые (Acipenseridae). Род осетров Acipenser (Linnaeus, 1758) на территории России включает в себя такие виды, как русский осетр (A. gueldenstaedtii), атлантический осетр (A. sturio), шип (A. nudiventris), белуга (Huso huso), сибирский осетр (A. baerii), стерлядь (A. ruthenus), калуга (Huso dauricus), севрюга (A. stellatus), сахалинский осетр (A. mikadoi), амурский осетр (A. schrenckii), стоит также отметить существование гибридов между такими видами, как стерлядь и калуга (Ст×К и К×Ст), стерлядь и амурский осетр (А×Ст и Ст×А), стерлядь и белуга, так называемый бестер и многие другие [1, 2, 3]. Данные виды отличаются между собой рядом признаков, по которым один вид возможно отличить от другого, что и позволяет понять, к какому виду относится та или иная рыба. Цель данной работы — обследовать предполагаемые экземпляры стерляди на соответствие признакам стерляди, свойственной для р. Иртыш. Материалы и методы. Для выполнения работы проводился контрольный лов особей стерляди в летний период 2018 г. в р. Иртыш в пределах Тобольского района Тюменской области. Лов осуществлялся ставными и плавными разноячейными сетями ячеей 24-38 мм из пятиметровых отрезков, с шагом ячеи — 2 мм, длиной ставной сети — 40 м, длиной плавной сети — 60 м, высотой — 2 м. Определение биологических и морфометрических показателей, а также определение возраста проводилось в соответствии с общепринятыми методиками [4-7]. Фотографии жучек сделаны с помощью бинокуляра ЛОМО МСП-1 и фотоаппарата Nikon D5100 с использованием режима макросъёмки. Сравнения характеристик экземпляров, отличных от обычной стерляди, проводили с характеристиками стерляди, полученными для судебных экспертиз в период 2015-2017 гг. Идентификация видов Все виды осетровых имеют относительно сходный внешний облик и общий план строения: тело с пятью рядами костных пластинок, так называемые «жучки», нижний рот и гетероцеркальный хвостовой плавник. Морфологические различия между видами осетровых, как правило, незначительны [1, 3]. Тем не менее основными идентификационными характеристиками видов внутри группы осетровых рыб, как правило, являются форма рыла или его индекс по отношению к половине длины головы, форма головы, расположение рта, форма рта, число жаберных тычинок, особенности кожного покрова (наличие и форма чешуек между рядами жучек), число и размер жучек, формула плавников, форма усиков. Эти признаки относятся к наиболее характерным для видов осетровых. Стоит отметить, что перечисленные признаки подвержены вариабельности и у многих видов могут перекрываться, и всё же в большинстве случаев с их помощью удаётся успешно дифференцировать таксоны [3, 8, 9]. Результаты и обсуждение В данной работе проводилось исследование пяти особей осетровых с внешним видом похожим на стерлядь, но имеющих особенности в форме жучек и линейно-весовых показателях, что отличало их от типичной стерляди в водах р. Иртыш. Первично наблюдаемыми признаками являются более заострённые дорсальные (рис. 1), латеральные (рис. 2) и вентральные жучки. а б Рис. 1. Дорсальные жучки экземпляра с отличиями и стерляди бассейна р. Иртыш: а — экземпляр с отличительными признаками; б — обычная стерлядь а Рис. 2. Латеральные жучки экземпляра с отличиями и стерляди бассейна р. Иртыш: а — экземпляр с отличительными признаками б Рис. 2. Окончание. Латеральные жучки экземпляра с отличиями и стерляди бассейна р. Иртыш: б — обычная стерлядь Для более детального рассмотрения строения жучки были исследованы под бинокуляром. Под увеличением отмечается значительная вытянутость шипика жучки неизвестного экземпляра, по сравнению с жучками стандартной стерляди (рис. 3). а б в г Рис. 3. Дорсальные жучки под увеличением: а — дорсальные жучки неизвестных экземпляров; б — дорсальные жучки стерляди, характерной для р. Иртыш; в — контур дорсальных жучек неизвестных экземпляров; г — контур дорсальных жучек стерляди, характерной для р. Иртыш Первоначально показалось наличие сходства жучек неизвестных особей с жучками сибирского осетра, что натолкнуло на мысли о гибридизации (рис. 4). Рис. 4. Сибирский осетр системы рек Обь — Лена Хоть строение жучек схоже, но их расположение характерно для каждого вида. У стерляди они тесно смыкаются между собой, дорсальные жучки несколько входят друг в друга — задняя в переднюю, образуя сплошной, непрерывный ряд. У осетра между жучками остаются промежутки (рис. 5) [8]. а б Рис. 5. Расположение жучек: а — сибирский осетр; б — стерлядь При исследовании строения латеральных жучек, кроме более вытянутого шипика, замечены дополнительные колючки (рис. 6). а б в г Рис. 6. Латеральные жучки под увеличением: а — жучки неизвестных экземпляров: 1 — дополнительные колючки; б — контур латеральных жучек неизвестных экземпляров; в — жучки стандартной стерляди; г — контур латеральных жучек стандартной стерляди д е Рис. 6. Окончание. Латеральные жучки под увеличением: д — жучка сибирского осетра; е — контур латеральной жучки сибирского осетра О наличии подобных колючек в литературе у стерляди или других видов осетровых рыб информации не было обнаружено. Нами же подобные колючки наблюдались на некоторых латеральных жучках у сибирского осетра (Уватский район) (рис. 6, д, е) Как было отмечено ранее, линейно-весовые характеристики неизвестных особей превосходят показатели особей, полученных для судебных экспертиз 2015-2017 гг. В нашей выборке неизвестных экземпляров все особи были в возрасте годовиков в ювенальной стадии зрелости. Среднее значение массы в свою очередь составило 144 г с lim 122-160 г, когда годовики выборки на экспертизу были представлены особями со средней массой 84,7 г с lim 54-142 г. Это различие также натолкнуло на размышление о возможных гибридах, т. к. подобные массовые результаты имеет гибрид стерляди и белуги — бестер. Годовики данного гибрида в возрасте 1 года имеют массу 150-160 г [3, 10]. Также наблюдается различие в линейных показателях. Неизвестные особи имеют среднее значение абсолютной длины, равное 37,7 см с lim 37-39, против 29 см с lim 23,9-33 у стерляди, свойственной для р. Иртыш. Считается, что острорылые и тупорылые формы стерляди на Иртыше отличаются темпами роста между собой: короткорылая форма — быстрорастущая, длиннорылая — медленнорастущая [11]. В данной группе неизвестных рыб не наблюдается короткорылых особей. Этот факт отбросил предположение о причинах различия в сравнении разных форм или рас стерляди. Есть мнение, что на длину рострума влияют условия питания и нет оснований для выделения различных рас быстро и медленнорастущих. [12]. Но это не влияет на вывод, потому как питание неопознанных рыб осуществляется в той же экологической нише, что и питание типичной стерляди. Отмечается, что наиболее характерным признаком для определения вида является число латеральных жучек [8]. В нашем случае среднее значение латеральных жучек у неизвестных особей равнялось 48,2 (табл. 1). Таблица 1 Средние значения количества жучек у различных осетровых Жучки Дорсальные Латеральные Вентральные Неизвестные экземпляры 16 48,2 9,8 Стерлядь р. Иртыш (2015-2017 гг.) 14,2 62,4 14,3 Стерлядь р. Ока [12] 13,8 63,,4 14,5 Стерлядь Казахстана [11] 14,2 62,3 14,6 Гибрид Ст*×А** [2] — 37,4 8,6 Гибрид А×Ст [2] — 41,6 10,1 Гибрид Ст×К*** [2] — 44,4 9,9 Гибрид К×Ст [2] — 41 10,7 Бестер [3] — 52 — Сибирский осетр [2] — 44,8 10,2 Калуга [2] — 33,3 9,1 * Ст — стерлядь; ** А — амурский осетр; *** К — калуга. В выборке стерляди за 2015-2017 гг. (128 шт.) насчитывалось — 62,4. В целом для стерляди на территории Российской Федерации характерны границы значений латеральных жучек от 56 до 71. Несмотря на заявления, что с числом ниже 50 жучек стерлядь не встречается, иногда попадаются особи с числом латеральных жучек 49. Среднее значение количества латеральных жучек у неизвестных экземпляров стоит на краю возможных пределов соответствия стерляди. Однако нельзя не отметить, что в выборке присутствуют особи с количеством жучек 43, что не входит в рамки определения стерляди на р. Иртыш и в целом. Значения ниже 50 латеральных жучек соответствуют, как правило, различным гибридам стерляди с осетрами, калугой [2, 3, 12-16]. Можно предположить, что малое число латеральных жучек объясняется тем, что размер самих жучек у неизвестных экземпляров больше, чем у обыкновенной стерляди. Так как у разных видов осетровых число всех жучек различно — оно является существенным систематическим и, следовательно, идентификационным признаком [8]. Потому были рассмотрены дорсальные и вентральные жучки тоже. Судя по таблице 1, можно заключить, что среднее значение дорсальных жучек неизвестных особей превосходит среднее значение жучек стерляди. Учитывая, что пределы значений числа дорсальных жучек стерляди соответствует 11-18 шт. , нет оснований говорить о различии в данном признаке. Вероятно, различие средних величин обусловлено малым числом выборки неизвестных экземпляров [8, 12, 14-17]. Среднее значение вентральных жучек, наоборот, меньше средних значений, характерных для стерляди. Сходства отмечены только с гибридами или же другими видами осетровых. Среди неизвестных особей встречались особи с семью и девятью вентральными жучками. Данное количество не входит в количественные пределы вида стерлядь — 10-20, что наталкивало на сомнения по поводу отношения неизвестных экземпляров к стерляди [2, 8, 12, 14, 16, 17]. Определение числа жучек не может являться исчерпывающим диагностическим инструментом, т. к. происходят перекрытия с другими видами, например в латеральных жучках — с шипом, вентральных — с севрюгой и т. д. [18]. В лабораторных условиях для идентификации учитывают такие видовые признаки, как строение и число жаберных тычинок. Тычинки стерляди имеют форму конического треугольника. Их расположение характерно только для этого вида: они входят друг в друга из двух рядов, как зубцы шестерни. Один ряд расположен на переднем крае, другой — на заднем [8]. Жаберные тычинки исследуемых экземпляров соответствуют по строению жаберным тычинкам стерляди. Среднее число тычинок на первой жаберной дуге (25 с lim 20-29) тоже соответствует пределам по количеству свойственным для стерляди — 15-34 по стране в целом [8, 12, 15, 16, 19]. Признак, на который не всегда обращают внимание, — количество лучей в дорсальном и анальном плавниках. Среднее количество лучей в плавниках у исследуемой стерляди составило D — 37 с lim 35-38, А — 21,6 с lim 20-23 (табл. 2). Таблица 2 Средние значения количества лучей в дорсальном и анальном плавниках Плавник Дорсальный D Анальный А Неизвестный экземпляр 37 21,6 Стерлядь р. Иртыш (2015-2017 гг.) 38,8 22,9 Стерлядь Казахстана [11] 38,7 20,5 Стерлядь р. Обь [16] 41,2 23,3 Стерлядь р. Ока [12] 44,7 25,7 Такое количество лучей в плавниках соответствует виду стерлядь, т. к. возможные пределы составляют: D — 32-49, А — 16-34 [8, 12, 14, 16, 17]. Исходя из данных табл. 2, можно заключить, что число лучей в плавниках неизвестных особей соответствует числу лучей в плавниках иртышских популяций стерляди. Как известно, у стерляди бахромчатые усики, что является видоспецифичным признаком, у других видов и даже гибридов стерляди бахромки отсутствуют [3]. Определено наличие бахромок усиков неизвестных экземпляров, что указывает на высокую вероятность того, что данные рыбы относятся к виду стерлядь. Заключение Таким образом, данные неизвестные особи, вероятнее всего, являются стерлядью, могут быть отдельной морфой, т. к. по большинству признаков отмечено перекрытие со стерлядью, свойственной для р. Иртыш. Сравнение с известными гибридами стерляди показало, что данная рыба не является гибридом. Для уточнения систематического положения исследуемых рыб требуется значительное количество экземпляров, а также анализ пластических признаков, генетический анализ.

Влияние холодового шока на уровень плоидности и раннее онтогенетическое развитие стерляди, A. ruthenus L.

1. Биллар Р., Лекуантр Г. Биология и сохранение осетровых и веслоносов. Преподобный Фиш Биол. Рыбы. 2001; 10: 355–392. doi: 10.1023/A:1012231526151. [CrossRef] [Google Scholar]

2. Де ла Эрран Р., Роблес Ф., Мартинес-Эспин Э., Лоренте Дж., Рехон К.Р., Гарридо-Рамос М.А., Руис Рехон М. Генетическая идентификация западно-средиземноморских осетровых и его значение для сохранения. Консерв. Жене. 2004; 5: 545–551. doi: 10.1023/B:COGE.0000041023.59291,39. [CrossRef] [Google Scholar]

3. Чандра Г., Фопп-Байат Д. Тенденции в аквакультуре и сохранении осетровых: обзор молекулярных и цитогенетических инструментов. Преподобный Аквак. 2021; 13: 119–137. doi: 10.1111/raq.12466. [CrossRef] [Google Scholar]

4. Детлафф Т.А., Гинзбург А.С., Шмальгаузен О.И. Осетровые рыбы: биология развития и аквакультура. Спрингер; Берлин, Германия: 1993. с. 300. [CrossRef] [Google Scholar]

5. Havelka M., Hulák M., Bailie D.A., Prodöhl P.A., Flajšhans M. Обширные дупликации генома у осетровых: новые доказательства микроспутниковых данных. Дж. Заявл. Ихтиол. 2013;29: 704–708. doi: 10.1111/jai.12224. [CrossRef] [Google Scholar]

6. Людвиг А. Идентификация видов Acipenseriformes в торговле. Дж. Заявл. Ихтиол. 2008; 24 ((Приложение 1)): 2–19. doi: 10.1111/j.1439-0426.2008.01085.x. [CrossRef] [Google Scholar]

7. Bronzi P., Chebanov M., Michaels J.T., Wei Q., ​​Rosenthal H., Gessner J. Производство мяса и икры осетровых рыб: глобальное обновление 2017 г. J. Appl. Ихтиол. 2019;35:257–266. doi: 10.1111/jai.13870. [CrossRef] [Google Scholar]

8. Бретт Дж. Р. Энергетическая реакция лосося на температуру. Изучение некоторых тепловых связей в физиологии и пресноводной экологии нерки ( Oncorhynchus nerka ) Am. Зоол. 1971; 11: 99–113. doi: 10.1093/icb/11.1.99. [CrossRef] [Google Scholar]

9. Van Eenennaam J.P., Linares-Casenave J., Deng X., Doroshov S.I. Влияние температуры инкубации на эмбрионы зеленого осетра, Acipenser medirostris . Окружающая среда. биол. Рыбы. 2005; 72: 145–154. doi: 10.1007/s10641-004-8758-1. [CrossRef] [Google Scholar]

10. Гюральп Х., Почерняева К., Блеча М., Поликар Т., Пшеничка М., Сайто Т. Развитие и влияние температуры воды на скорость развития судака Sander lucioperca эмбрионов. Териогенология. 2017;104:94–104. doi: 10.1016/j.theriogenology.2017.07.050. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Бейтингер Т.Л., Беннетт В.А., Макколи Р.В. Температурные допуски североамериканских пресноводных рыб, подверженных динамическим изменениям температуры. Окружающая среда. биол. Рыбы. 2000; 58: 237–275. doi: 10.1023/A:1007676325825. [CrossRef] [Google Scholar]

12. Сомеро Г.Н. Связь биогеографии с физиологией: эволюционная и аккламационная корректировка температурных пределов. Фронт. Зоол. 2005; 2:1–9. дои: 10.1186/1742-9994-2-1. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

13. Касимов Р. Эколого-физиологические особенности развития ценных и промысловых рыб в Азербайджане. Вяз; Баку, Азербайджан: 1987. с. 171. (In Russian) [Google Scholar]

14. Ван Ю.Л., Бинковский Ф.П., Дорошов С.И. Влияние температуры на раннее развитие белуги и озерного осетра, Acipenser transmontanus и A. fulvescens . Окружающая среда. биол. Рыбы. 1985;14:43–50. doi: 10.1007/BF00001575. [CrossRef] [Google Scholar]

15. Болкер Дж.А. Эмбриология. В: ЛеБретон Г., Бимишанд Ф., МакКиндли Р., редакторы. Осетровые и веслоносы Северной Америки. Издательство Kluwer Academic Publishers; Бостон, Массачусетс, США: 2004. стр. 134–146. [CrossRef] [Google Scholar]

16. Гюральп Х., Почерняева К., Блеча М., Поликар Т., Пшеничка М., Сайто Т. Раннее эмбриональное развитие судака ( Sander lucioperca ), связанное с микроманипуляциями. Чешский Дж. Аним. науч. 2016;61:273–280. doi: 10.17221/35/2015-CJAS. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

17. Нам Ю.К., Ким Д.С. Плоидный статус потомства от скрещивания тетраплоидных самцов и диплоидных самок илистого вьюна ( Misgurnus mizolepis ) Аквакультура. 2004; 236: 575–582. doi: 10.1016/j.aquaculture.2003.12.026. [CrossRef] [Google Scholar]

18. Такле Х., Баеверфьорд Г., Лунде М., Кольстад К., Андерсен О. Влияние теплового и холодового воздействия на экспрессию HSP70 и развитие уродств во время эмбриогенеза атлантического лосося ( Salmo salar ) Аквакультура. 2005;249: 515–524. doi: 10.1016/j.aquaculture.2005.04.043. [CrossRef] [Google Scholar]

19. Kim E.J., Park C., Nam Y.K. Влияние температуры инкубации на жизнеспособность эмбрионов и время вылупления у русского осетра ( Acipenser gueldenstaedtii ) Рыба. Водный. науч. 2018;21:1–8. doi: 10.1186/s41240-018-0101-4. [CrossRef] [Google Scholar]

20. Тивари Б.К., Кирубагаран Р., Рэй А.К. Биология триплоидных рыб. Преподобный Фиш Биол. Рыбы. 2004; 14: 391–402. doi: 10.1007/s11160-004-8361-8. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

21. Валенти Р.Дж. Индуцированная полиплоидия у Tilapia aurea (Steindachner) с помощью обработки температурным шоком. Дж. Фиш Биол. 1975; 7: 519–528. doi: 10.1111/j.1095-8649.1975.tb04627.x. [CrossRef] [Google Scholar]

22. Лемуан Х.Л., мл., Смит Л.Т. Полиплоидия, вызванная холодовым шоком у речной форели. Транс. Являюсь. Рыбы. соц. 1980; 9: 626–631. doi: 10.1577/1548-8659(1980)109<626:PIIBTB>2.0.CO;2. [CrossRef] [Google Scholar]

23. Уолтерс В.Р., Либи Г.С., Крисман К.Л. Влияние триплоидии на рост и развитие гонад канального сома. Транс. Являюсь. Рыбы. соц. 1982;111:102–105. doi: 10.1577/1548-8659(1982)111<102:EOTOGA>2.0.CO;2. [CrossRef] [Google Scholar]

24. Араи К., Таниура К., Чжан К. Получение потомства второго поколения гексаплоидного вьюна. Рыбы. науч. 1999; 65: 186–192. doi: 10.2331/fishsci.65.186. [CrossRef] [Google Scholar]

25. Devlin R.H., Biagi C.A., Yesaki T.Y. Рост, жизнеспособность и генетические характеристики GH-трансгенных штаммов кижуча. Аквакультура. 2004; 236: 607–632. doi: 10.1016/j.aquaculture.2004.02.026. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

26. Джонсон Р.М., Шримптон Дж.М., Хит Дж.В., Хит Д.Д. Семейство, методология индукции и влияние взаимодействия на продуктивность диплоидной и триплоидной чавычи ( Oncorhynchus tshawytscha ) Аквакультура. 2004; 234:123–142. doi: 10.1016/j.aquaculture.2004.01.024. [CrossRef] [Google Scholar]

27. Вернер И., Виант М.Р., Розенблюм Э.С., Гантнер А.С., Тьердема Р.С., Джонсон М.Л. Реакция клеток на температурный стресс у стальноголовой форели ( Onchorynchus mykiss ) пестрят с разной историей выращивания. Рыбная физиол. Биохим. 2006; 32: 261–273. doi: 10.1007/s10695-006-9105-6. [CrossRef] [Google Scholar]

28. Ван Эненнаам А.Л., Ван Эненнаам Дж.П., Медрано Дж.Ф., Дорошов С.И. Экспресс-верификация мейотического гиногенеза и полиплоидии у белого осетра ( Acipenser transmontanus Richardson) Аквакультура. 1996; 147: 177–189. doi: 10.1016/S0044-8486(96)01369-5. [CrossRef] [Google Scholar]

29. Мимс С.Д., Шелтон В.Л. Индуцированный мейотический гиногенез у лопатоноса. Аква. Междунар. 1998;6:323–329. doi: 10.1023/A:1009280804945. [CrossRef] [Google Scholar]

30. Омото Н., Маэбаяси М., Адачи С., Араи К., Ямаути К. Соотношение полов триплоидов и гиногенетических диплоидов, индуцированных у гибридного осетра, бестера ( Huso huso самка × Acipenser ruthenus самец) Аквакультура. 2005; 245:39–47. doi: 10.1016/j.aquaculture.2004.12.004. [CrossRef] [Google Scholar]

31. Fopp-Bayat D. Верификация мейотического гиногенеза у сибирского осетра ( Acipenser baeri Brandt) с использованием микросателлитной ДНК и цитогенетических маркеров. Дж. Фиш Биол. 2007; 71: 478–485. doi: 10.1111/j.1095-8649.2007.01704.x. [CrossRef] [Google Scholar]

32. Фопп-Байат Д. Мейотический гиногенез выявил у сибирского осетра негомогаметную систему определения пола самок ( Acipenser baeri Brandt) Аквакультура. 2010; 305:174–177. doi: 10.1016/j.aquaculture.2010.04.011. [CrossRef] [Google Scholar]

33. Fopp-Bayat D., Kolman R. , Woznicki P. Индукция мейотического гиногенеза у стерляди ( Acipenser ruthenus ) с использованием спермы бестера, облученной УФ-излучением. Аквакультура. 2007; 264:54–58. doi: 10.1016/j.aquaculture.2006.12.006. [CrossRef] [Google Scholar]

34. Фопп-Баят Д., Янкун М., Возницкий П., Колман Р. Жизнеспособность диплоидных и триплоидных личинок сибирского осетра и гибридов бестера. Аква. Рез. 2007; 38: 1301–1304. doi: 10.1111/j.1365-2109.2007.01802.x. [CrossRef] [Google Scholar]

35. Fopp-Bayat D., Hliwa P., Ocalewicz K. Наличие гиногенетических самцов свидетельствует о женской гетерогаметности у стерляди Acipenser ruthenus L. Anim. Воспр. науч. 2018; 189:110–118. doi: 10.1016/j.anireprosci.2017.12.014. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

36. Fopp-Bayat D., Wlasow T., Ziomek E. Гематология гиногенетических диплоидов сибирского осетра Acipenser baerii Brandt. Акта Вет. Брно. 2013;82:81–85. doi: 10.2754/avb201382010081. [CrossRef] [Google Scholar]

37. Власов Т., Фопп-Байат Д. Влияние теплового шока на морфологические характеристики клеток крови сибирского осетра ( Acipenser baerii ) триплоиды. Акта Вет. Брно. 2011; 80: 215–218. doi: 10.2754/avb201180020215. [CrossRef] [Google Scholar]

38. Цзоу Ю.С., Вэй К.В., Пан Г.Б. Индукция мейотического гиногенеза у веслоноса ( Polyodon spathula ) и его подтверждение с использованием микросателлитных маркеров. Дж. Заявл. Ихтиол. 2011; 27: 496–500. doi: 10.1111/j.1439-0426.2011.01681.x. [CrossRef] [Google Scholar]

39. Сабер М.Х., Новейри С.Б., Пурказеми М., Ярмохаммади М. Индукция гиногенеза у севрюги ( Acipenser stellatus Pallas 1771) и его верификация с помощью микросателлитных маркеров. Аква. Рез. 2008; 39: 1483–1487. doi: 10.1111/j.1365-2109.2008.02015.x. [CrossRef] [Google Scholar]

40. Сабер М.Х., Новейри С.Б., Пурказеми М., Яздани М., Гороги А., Бахмани М., Пурдегани М., Чакмедуз Ф., Ярмохаммади М., Наврузфашхами М. Индукция мейотический гиногенез у шипа Acipenser nudiventris с использованием гетерологичной спермы, облученной УФ-излучением. Дж. Заявл. Жене. 2014; 55: 223–229. doi: 10.1007/s13353-013-0188-3. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

41. Saber M.H., Hallajian A. Изучение системы определения пола у шипа, Acipenser nudiventris с использованием мейотического гиногенеза. Аква. Междунар. 2014; 22: 273–279. doi: 10.1007/s10499-013-9676-z. [CrossRef] [Google Scholar]

42. Дональдсон М.Р., Арлингхаус Р., Хэнсон К.С., Кук С.Дж. Совершенствование науки «поймал-отпусти» с помощью биотелеметрии. Рыба Рыба. 2008; 9: 79–105. doi: 10.1111/j.1467-2979.2007.00265.x. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

43. Ховда Дж., Линли Т.Дж. Возможное применение гипотермии для анестезии взрослых тихоокеанских лососей. Н. Ам. Дж. Аквак. 2000; 62: 67–72. doi: 10.1577/1548-8454(2000)062<0067:TPAOHF>2.0.CO;2. [CrossRef] [Google Scholar]

44. Craig J.K., Foote C.J., Wood C.C. Доказательства температурно-зависимого определения пола у нерки ( Oncorhynchus nerka ) Can. Дж. Фиш. Аква. науч. 1996; 53: 141–147. дои: 10.1139/f95-152. [CrossRef] [Google Scholar]

45. Peruzzi S., Kettunen A., Primicerio R., Kauric G. Индукция триплоидии у атлантической трески тепловым ударом ( Gadus morhua L.) Aquac. Рез. 2007; 38: 926–932. doi: 10.1111/j.1365-2109.2007.01742.x. [CrossRef] [Google Scholar]

46. Пандиан Т.Дж., Котисваран Р. Индукция плоидности и контроль пола у рыб. Гидробиология. 1998; 384:167–243. doi: 10.1023/A:1003332526659. [CrossRef] [Google Scholar]

47. Morishima K., Oshima K., Horie S., Fujimoto T., Yamaha E., Arai K. Клональная диплоидная сперма диплоидно-триплоидного мозаичного вьюна, Misgullicaudatus ( Teleostei: Cobitidae) J. Exp. Зоол. Комп. Эксп. биол. 2004; 301: 502–511. doi: 10.1002/jez.a.49. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

48. Yoshikawa H., Morishima K., Fujimoto T., Yamaha E., Arai K. Одновременное образование гаплоидных, диплоидных и триплоидных яиц у диплоидно-триплоидных мозаичных гольцов. Дж. Фиш Биол. 2007; 71 ((Приложение B)): 250–263. doi: 10.1111/j.1095-8649.2007.01608.x. [CrossRef] [Google Scholar]

49. Morishima K., Fujimoto T., Sato M., Kawae A., Zhao Y., Yamaha E., Arai K. Холодовой шок уничтожает женские ядра в оплодотворенных яйцеклетках, чтобы вызвать андрогенез. в гольце ( Misgullicaudatus ), костистая рыба. БМС Биотехнология. 2011; 11:1–16. doi: 10.1186/1472-6750-11-116. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

50. Теплиц Р.Л., Джойс Дж.Э., Дорошов С.И., Мин Б.Х. Предварительный анализ плоидности диплоидных и триплоидных лососевых рыб. Можно. Дж. Фиш. Аква. науч. 1994; 51:38–41. дои: 10.1139/f94-293. [CrossRef] [Google Scholar]

51. Хуссейн М.Г. Подавление мейотических и митотических клеточных делений у нильской тиляпии, Oreochromis niloticus L., а также индукция триплоидов и двух типов гиногенетических диплоидов. Азиатская рыба. науч. 1995; 8: 133–142. [Google Scholar]

52. Егорова В., Псеницкая М., Лебеда И., Родина М., Сайто Т. Полиспермия дает жизнеспособные гаплоидные/диплоидные мозаики у осетровых. биол. Воспр. 2018; 99: 695–705. doi: 10.1093/biolre/ioy092. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

53. Gheyas A.A., Hussain M.G. Индукция триплоидии у жалящего сома Heteropneustes focusis с использованием холодового шока. Воспр. Нутр. Дев. 2001; 14: 323–332. дои: 10.33997/j.afs.2001.14.3.009. [CrossRef] [Google Scholar]

54. Wiggins T.A., Bender T.R.J.R., Mudrack V.A., Coll J.A. Развитие, питание, рост и выживание культивируемых личинок американской шеды при переходе от эндогенного к экзогенному питанию. прог. Рыба-культ. 1985; 47: 87–93. doi: 10.1577/1548-8640(1985)47<87:TDFGAS>2.0.CO;2. [CrossRef] [Google Scholar]

55. Эллиот Дж. М. Концепция критического периода для выживания молоди и ее значение для регулирования популяции молоди морской форели. Салмотрутта. Дж. Фиш. биол. 1989;35:91–98. doi: 10.1111/j.1095-8649.1989.tb03049.x. [CrossRef] [Google Scholar]

56. Чорроут Д., Чевассус Б., Криг Ф., Хаппе А., Бургер Г., Ренард П. Производство тетраплоидных самцов и диплоидных самок второго поколения — потенциал тетраплоидных рыб. Теор. заявл. Жене. 1986; 72: 193–206. doi: 10.1007/BF00266992. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

57. Fopp-Bayat D., Nitkiewicz A., Chandra G. Первое сообщение об эмбриональном и личиночном развитии мозаичной стерляди 2n/3n. Животное. 2021;15:100317. doi: 10.1016/j.animal.2021.100317. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

58. Piferrer F., Beaumont A., Falguiere J.C., Flajšhans M., Haffray P., Colombo L. Полиплоидные рыбы и моллюски: Производство, биология и применение в аквакультуре для улучшения производительности и генетического сдерживания. Аквакультура. 2009; 239:125–156. doi: 10.1016/j.aquaculture.2009.04.036. [CrossRef] [Google Scholar]

59. Флайшанс М., Гавелка М., Лебеда И., Родина М., Гела Д., Хубалек М. Применение удара гидростатического давления для удержания второго полярного тельца у стерляди ( Acipenser ruthenus ) Аквакультура. 2020;520:734947. doi: 10.1016/j.aquaculture.2020.734947. [CrossRef] [Google Scholar]

60. Nagler J.J. Продукция полиплоидии у лососевых. В: Ван Х.-П., Пиферрер Ф., Чен С.-Л., редакторы. Половой контроль в аквакультуре. Первый Джон Уайли и сыновья .; Хобокен, Нью-Джерси, США: 2019. стр. 297–304. [Google Scholar]

61. Alcantar-Vazquez J.P. Влияние обработки, вызывающей триплоидию холодовым шоком, на расщепление клеток, скорость вылупления и выживаемость триплоидных личинок пятнистого песчаного окуня ( Paralabrax maculatofasciatus ) Cienc. март 2016 г .; 42: 111–122. doi: 10.7773/cm.v42i2.2581. [CrossRef] [Google Scholar]

62. Султана Р.М. Дипломная работа. Университет Тромсё; Тромсё, Норвегия: 27 мая 2005 г. Прогноз жизнеспособности личинок на основе параметров качества яиц и моделей раннего дробления в экспериментах по индукции триплоидии у атлантической трески Gadus morhua L. [Google Scholar]

63. Diaz N.F., Iturra P. ., Veloso A., Estay F., Colihueque N. Физиологические факторы, влияющие на выработку триплоидов у радужной форели, Oncorhynchus mykiss . Аквакультура. 1993; 114:33–40. doi: 10.1016/0044-8486(93)

-W. [CrossRef] [Google Scholar]

64. Желязовская М. Формирование и строение оболочек икры у русского осетра Acipenser gueldenstaedtii (Acipenseriformes: Acipenseridae) J. Fish Biol. 2010; 76: 694–706. doi: 10.1111/j.1095-8649.2009.02527.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

65. Dakin E.E., Avise J.C. Микросателлитные нулевые аллели в анализе отцовства. Наследственность. 2004;93: 504–509. doi: 10.1038/sj.hdy.6800545. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

66. Horvath L., Szabo T., Burke J. Hatchery, тестирование гранул, содержащих аналог GnRH, на овуляцию у четырех видов карповых. Польский Архивум. Гидробиологии. 1997; 44: 221–226. [Google Scholar]

67. McQuown E.C., Sloss B.L., Sheehan R.J., Rodzen J., Tranah G.J., May B. Микросателлитный анализ генетической изменчивости осетровых: новые последовательности праймеров для Scaphirhynchus и Acipenser . Транс. Являюсь. Рыбы. соц. 2000;129:1380–1388. doi: 10.1577/1548-8659(2000)129<1380:MAOGVI>2.0.CO;2. [CrossRef] [Google Scholar]

68. Фопп-Байат Д. Применение фингерпринт-анализа ДНК для идентификации смешанных группировок сибирского осетра ( Acipenser baeri Brandt) Pol. Дж. Нат. науч. 2009; 24:169–176. doi: 10.2478/v10020-009-0016-8. [CrossRef] [Google Scholar]

69. Fopp-Bayat D., Ocalewicz K. Активация стерляди-альбиноса Acipenser ruthenus яйцеклеток с помощью сперматозоидов бестерских гибридов, облученных УФ-излучением, для получения гиногенетического потомства. Воспр. Дом. Аним. 2015; 50: 554–559. doi: 10.1111/rda.12521. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

PRIME PubMed | Физиологические изменения и репродуктивная способность стерляди Acipenser ruthenus при инъекциях тиамина

Abstract

Оценить влияние тиамина на физиологические изменения и нерестовую активность стерляди Acipenser ruthenus, 45 выращиваемых самок (698,6 ± 8,9 г) были случайным образом распределены по 9 резервуарам (1000 л) и содержали в рационе 1 г/кг антитиаминового препарата. Это было предусмотрено за 5 месяцев до нереста. Тиамина гидрохлорид вводили внутрибрюшинно рыбам в трех различных дозах: 0 (Т0, контроль), 5 (Т5) и 50 (Т50) мг/кг массы тела на 30-й, 90-й и 150-й дни после начала эксперимента. Через пять месяцев результаты не показали существенных различий в прибавке массы тела и уровне гемоглобина, но гематокрит значительно увеличился в группе Т5. Не было существенной разницы в глюкозо-6-фосфатдегидрогеназе и эстрадиоле-17β, но уровень тестостерона был значительно повышен в группе Т50. Концентрация общего тиамина в яйцах была значительно выше в Т50, чем в контрольной группе. Плодовитость и смертность личинок на 6-й день после вывода (dph) не показали существенных различий между обработками, в то время как количество яиц на грамм было значительно ниже в T0, чем наблюдалось в T50. На вес личинок при 1 (11,6 мг) и 6 (23,1 мг) сутках в час и на длину личинок при 6 (15,6 мм) саженях в час значительно влияла обработка инъекцией самого высокого уровня тиамина (Т50). Симптомы заболеваний, такие как деформация желточного мешка, неустойчивый характер плавания и потеря равновесия, наблюдались на 4 днях в час в группах Т0 и Т5. Общие результаты показали, что инъекция тиамина оказывает положительное влияние на репродуктивную функцию осетровых, а негативное воздействие антитиамина на потомство может быть уменьшено инъекцией этого витамина маточному стаду.

Authors+Show Affiliations

Ghiasi S

Кафедра рыболовства, Факультет природных ресурсов, Университет Гуилана, Соумех Сара, 1144, Гуйлан, Иран.

Фалахаткар B

Факультет рыболовства, факультет природных ресурсов, Гиланский университет, Совмех Сара, 1144, Гилян, Иран. Электронный адрес: [email protected].

Arslan M

Кафедра аквакультуры, факультет рыболовства, Университет Ататюрка, Эрзурум, Турция.

Dabrowski K

Школа окружающей среды и природных ресурсов Университета штата Огайо, Колумбус, Огайо 43210, США.

MeSH

AnimalsDose-Response Relationship, DrugEstradiolFemaleFertilityFishesGlucosephosphate DehydrogenaseLarvaMaternal Nutritional Physiological PhenomenaOvumReproductionTestosteroneThiamineThiamine Deficiency

Pub Type(s)

Controlled Clinical Trial

Journal Article

Language

eng

PubMed ID

28131605

Citation

Ghiasi, Sareh, et al. «Физиологические изменения и репродуктивная функция стерляди Acipenser Ruthenus, инъецированной тиамином». Наука о репродукции животных, vol. 178, 2017, стр. 23-30.

Гиази С., Фалахаткар Б., Арслан М. и др. Физиологические изменения и репродуктивная функция стерляди Acipenser ruthenus при введении тиамина. Анимация Репродукция Наука . 2017;178:23-30.

Гиази С., Фалахаткар Б., Арслан М. и Дабровски К. (2017). Физиологические изменения и репродуктивная функция стерляди Acipenser ruthenus при введении тиамина. Наука о репродукции животных , 178 , 23-30. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2017.01.005

Ghiasi S, et al. Физиологические изменения и репродуктивная функция стерляди Acipenser Ruthenus при введении тиамина. Репродукция анимации Sci. 2017;178:23-30. PubMed PMID: 28131605.

* Названия статей в формате цитирования AMA должны быть в регистре предложений

MLAAMAAPAVANCOUVER

TY — JOUR
T1 — Физиологические изменения и репродуктивная способность стерляди Acipenser ruthenus, которой вводили тиамин.
AU — Гиази, Сарех,
AU — Фалахаткар, Бахрам,
AU — Арслан, Мурат,
AU — Домбровски, Конрад,
Y1 — 15.01.2017/
ПГ — 11.06.2016/получил
ПГ – 07.01.2017/пересмотрено
PY — 13.01.2017/принято
PY – 31 января 2017 г./опубликовано
КГ — 2017/3/4/медлайн
PY — 30 января 2017 г.
KW — качество яиц
KW — физиология
КВ — Репродукция
KW — Осетр
KW — витамин B(1)
СП — 23
ЭП — 30
JF — Наука о репродукции животных
JO — Anim Reprod Sci
ВЛ — 178
N2 — Оценить влияние тиамина на физиологические изменения и нерестовую активность стерляди Acipenser ruthenus, 45 выращиваемых самок (698,6 ± 8,9 г) были случайным образом распределены по 9 резервуарам (1000 л) и содержали в рационе 1 г/кг антитиаминового препарата. Это было предусмотрено за 5 месяцев до нереста. Тиамина гидрохлорид вводили внутрибрюшинно рыбам в трех различных дозах: 0 (Т0, контроль), 5 (Т5) и 50 (Т50) мг/кг массы тела на 30-й, 90-й и 150-й дни после начала эксперимента. Через пять месяцев результаты не показали существенных различий в прибавке массы тела и уровне гемоглобина, но гематокрит значительно увеличился в группе Т5. Не было существенной разницы в глюкозо-6-фосфатдегидрогеназе и эстрадиоле-17β, но уровень тестостерона был значительно повышен в группе Т50. Концентрация общего тиамина в яйцах была значительно выше в Т50, чем в контрольной группе. Плодовитость и смертность личинок на 6-й день после вывода (dph) не показали существенных различий между обработками, в то время как количество яиц на грамм было значительно ниже в T0, чем наблюдалось в T50. На вес личинок при 1 (11,6 мг) и 6 (23,1 мг) сутках в час и на длину личинок при 6 (15,6 мм) саженях в час значительно влияла обработка инъекцией самого высокого уровня тиамина (Т50).