Как ловить стерлядь

Rybolov.ORG

Обзоры снастей

Обзоры снастей. Статьи про рыбалку

Рыболову на заметку

Как ловить стерлядь

Стерлядь считается рыбой неприхотливой. Будучи пойманной, она редко срывается с крючка, так что качество и толщина основной лески в снасти особого значения не играет. Правда, переигрывать также не следует. Используя леску сечением в 1 мм, поводки и крючки также придется применять довольно толстые. А это уже будет создавать определенные трудности при зацепах, поскольку разорвать такую леску довольно трудно.

В последнее время в среде рыболовов-стерлядников большую популярность получила ловля на бегущую оснастку. Ее основой является мощный, недорогой спиннинг, снабженный инерционной катушкой. Ее еще называют донкой. В качестве преимуществ ее применения можно назвать:

– более точный заброс;

– быстрое вытаскивание оснастки и быстрое ее забрасывание;

– более легкое и спокойное вываживание пойманной рыбы;

– благодаря меньшему количеству применяемых крючков, а также из-за некоторого приподнимания снасти в процессе вываживания, случается меньше зацепов и прочих неприятностей;

– при ужении на большой воде используемая леска беспрестанно забивается различным мусором и травой. Поскольку в данном варианте крючков используется мало, количество «наноса» также становится значительно меньшим.

В качестве основной лески в данной снасти применяют плетеную, довольно тонкого сечения – от 0,25 до 0.35 мм. Для поводков используется обычная мононить диаметром от 0,2 до 0,25 мм и длиной 20-30 см. Расстояние между поводками оставляют 60 – 80 см. Грузило подбирают в зависимости от сечения основной лески, силы течения, а также возможной дальности заброса. Чем большего диаметра будет используемая леска, а также чем большее ее количество будет задействовано, тем более тяжелый груз следует поставить.

Выбирая груз для данной снасти следует помнить о нескольких правилах. Выбирая его форму, многие рыболовы останавливаются на ложке либо треугольнике. Это неплохой выбор. При извлечении этой оснастки из воды она не перекручивается, стало быть, леска не будет постоянно скрученной. Но можно воспользоваться и грушевидным грузилом конусообразной формы. Оно также имеет ряд преимуществ. В частности при вытаскивании оно меньше других зацепляется за водоросли и иные донные препятствия.

Крючки для ловли стерляди выбирают №5-7 с длинным цевьем. Последнее условие должно выполняться беспрекословно, поскольку рыба обладает достаточно большой и мясистой пастью, из которой крючок обладающий малым цевьем довольно проблематично извлекать. Известно множество случаев, когда стерлядь ловится, что называется не по правилам – то «за краешек губы», то забагривается просто крючком за тело. Не удивляйтесь, это тоже улов.

В начале лета стерлядь прекрасно ловится на донку с резиновым амортизатором – «резинку». Сей метод является достаточно продуктивным, поскольку, в отличие от бегущей оснастки, при его использовании имеется возможность применения большого количества поводков, которые не будут пугать рыбу. В летний сезон стерлядь подходит достаточно близко к берегу, так что далеко забрасывать грузило этой снасти не придется.

Где же следует искать эту рыбу? Конкретного и понятного определения места не существует. Стерлядь можно найти в совершенно разных уголках водоема. Места кормежки она может менять по нескольку раз в день. Все зависит от времени суток, погоды и уровня воды. В незнакомом водоеме наилучшим вариантом считается облавливание мест в начале длиной отмели или в конце ямы.

В периоды большой воды стерлядь старается затаиться в тиховодном затончике, в то время как пропитание ищет на границе стоячей воды и течения. Особенно актуальным такое поведение рыбы является в начале летнего сезона. Ближе к осени, когда температура воды начинает неуклонно понижаться, она уходит в ямы и на протяжении всего сезона лишь изредка их покидает.

Удачной рыбалки!

См. также где ловить в ленобласти.

Как приготовить мастырку: горох и манка – классика рыбалки

Одна из самых уловистых насадок для леща –  мастырка. Готовится она сложнее, чем обычное тесто, но результаты стоят потраченных усилий. Кроме леща, на эту оригинальную приманку клюет карась, карп, густера, плотва и другие карповые.

Читать далее

Форма и глубина шпули рыболовной катушки

Рассмотрим четыре основных типа геометрии шпули спиннинговой катушки – глубокую (Classic), неглубокую (Air Spool), длинноконусную с правильным конусом (Long Cast), с обратным конусом (ABS).

Читать далее

Голавль и язь – такие похожие, но такие разные

Голавля и язя принято называть белыми хищниками. Внешне эти рыбы очень схожи.  Чем отличается язь от голавля – внешнй вид, места обитания и предпочтения.

Читать далее

ОБЗОР ДАННЫХ ПО БИОЛОГИИ СТЕРЛЯДИ ACIPENSER RUTHENUS (LINNAEUS, 1758)1 ФГБОУ ВО «АГТУ» — Эдиторум

Исследование по биологии, морфологии, экологии, питанию, размножению, поведению, а также о таксономическом статусе стерляди проводилось по литературным источникам, статьям, авторефератам, книгам, учебным пособиям, изданным в 1948-2017 гг. Представители осетровых входят в отряд осетрообразных рыб, который, в свою очередь, состоит из трех семейств: вымершего (хондростенд) и ныне живущих веслоносов и осетровых [1]. Род осетров Acipenser (Linnaeus, 1758) на территории России включает в себя такие виды, как русский осетр (A. gueldenstaedtii), атлантический осетр (A. sturio), шип (A. nudiventris), белуга (Huso huso), сибирский осетр (A. baerii), стерлядь (A. ruthenus), калуга (Huso dauricus), севрюга (A. stellatus), сахалинский осетр (A. mikadoi), амурский осетр (A. schrenckii) [2, 3]. Все виды осетровых имеют относительно сходный внешний облик и общий план строения: тело с пятью рядами костных пластинок, так называемые «жучки», нижний рот и гетероцеркальный хвостовой плавник. Морфологические различия между видами осетровых, как правило, незначительны [4]. Одним из представителей осетровых является стерлядь Acipenser ruthenus (Linnaeus, 1758), которая отличается от других видов большим числом боковых (от 56 до 71), спинных (от 11 до 18), брюшных (от 10 до 20) жучек. В спинном плавнике у нее насчитывается от 32 до 49 лучей, в анальном — от 16 до 34 лучей. Усики, расположенные на нижней части головы, бахромчатые. Рот небольших размеров расположен на нижней стороне головы, нижняя губа прервана. Окрас в области спины от темно-серого до серовато-коричневого, постепенно становится светлее на боках и в области брюха меняется до серовато-белого; плавники серые. Внутри вида выделяют острорылые и тупорылые формы. Стерлядь является самым мелким представителем осетровых. Ранее в уловах встречались особи в среднем 1 м и массой до 6-6,5 кг, максимальные ее размеры достигали 1,25 м, а масса 16 кг [5]. В нынешних же уловах длина стерляди (например, в бассейне Верхней Оби) составляет от 15 до 55 см, а в основу вылова преимущественно входят особи с общей длиной тела от 30 до 35 см (62 %). Доля особей с размерами от 45 см и выше не превышает 3-5 % [6]. Продолжительность жизни стерляди от 22 до 27 лет, предельный возраст может достигать 30 лет. Возрастной состав уловов колеблется от 4 до 10-11 лет [1, 5, 7]. Стерлядь распространена в бассейнах Черного, Азовского, Каспийского, Балтийского, Белого, Баренцева, Карского морей. Живет в реках, обычно держится в глубоких местах с быстрым течением. Она наиболее многочисленна в речных бассейнах Дуная, Днестра, Днепра, Дона, Волги, Северной Двины. Также встречается в Онежском и Ладожском озерах, завозилась в Амур и реки Камчатки, акклиматизирована в р. Печора [8]. Считается, что из всех осетровых стерлядь имеет самое широкое распространение [7]. В бассейне Оби и Енисея представлена подвидом — сибирская стерлядь Acipenser ruthenus marsiglii (Brandt, 1833). Непосредственно в Обь-Иртышском бассейне распространяется от Черного Иртыша (Китай), рек Бия и Катунь до Обской губы [9]. Стерлядь исключительно пресноводная рыба [1], но также встречаются единичные особи, способные заходить в слабосоленые воды [10]. Всю зиму стерлядь проводит не питаясь, в малоподвижном состоянии на глубоких участках, ямах, где собирается еще с осени [8]. Стерлядь находится в зимовальных ямах не только в зимний период. Там же может развивать молодь, а из-за гидродинамической тени рыба может находиться в яме круглогодично [11]. Перед зимой у рыбы идет нагул. У стерляди нагул происходит на русловых участках реки и свалах ям с глинистым или каменистым дном на больших глубинах (6-10 м) [1]. В целом, помимо глубины, для стерляди важны еще другие условия, такие, например, как свойства дна и воды, которые обусловливают различия в цвете и даже вкусе рыбы. Она старается избегать медленных, иловатых, притом всегда мелких рек. В них, как и в озерах, стерлядь только кормится. Стерлядь любит песчаное дно, чистую, прохладную и в меру быстротечную воду. Старается держаться у дна на глубоких участках реки [5, 12]. Питается стерлядь личинками водных насекомых, червями, моллюсками, икрой других рыб. Большое значение в питании имеют различные микроорганизмы, поселяющиеся на упавших в воду деревьях [5, 8]. В процессе онтогенеза состав питания стерляди меняется. Так, с увеличением длины тела в составе рациона увеличивается доля моллюсков. Состав питания может зависеть и от участков нагула [13]. Питание стерляди проходит преимущественно в ночное время суток [14]. Активность питания зависит не только от времени суток, но и от температуры воды: снижается температура — снижается интенсивность питания [13]. Показатель интенсивности питания максимально возрастает с прогревом воды выше 10-12 °С [6]. В искусственных условиях стерлядь питается гранулированным кормом, но приучается к нему, только если выращивалась на нем с личиночной стадии. Взятые особи из реки не переходят на питание искусственными кормами [15]. Непосредственно в Обь-Иртышском бассейне спектр питания стерляди в основном составляют следующие группы зообентоса: личинки хирономид (Chironomidae), мошек (Simuliidae), поденок (Ephemeroptera) и стрекоз (Odonata), а также моллюски (Mollusca) [6]. Половая зрелость у самок и самцов наступает в различные возрастные периоды. Как правило, у самцов половое созревание происходит на 1-3 года раньше, чем у самок. В популяциях в разных регионах половая зрелость наступает в разные периоды, что связано с кормовыми и климатическими условиями. Обычно половозрелость колеблется в границах 3-7 лет у самцов и 4-12 — у самок. От таких факторов, как длина или масса тела, период наступления полового созревания не зависит. Так, например, в Енисее самки стерляди становятся половозрелыми на седьмой или восьмой год жизни при длине тела 50 см, а на Волге — в том же возрасте, но при длине 40 см [1, 5, 7, 14]. Нерест стерляди происходит в конце весны (в зависимости от географической широты водоема с апреля по июнь) на быстринах с песочно-галечным грунтом. Икра темная и клейкая, откладывается на гальку. Обычно глубина расположения нерестилищ от 7 до 15 м. Нерест зависит не только от глубины, но и от температуры воды, 10-15 °С — оптимальная температура для нереста. Также от температуры воды зависит развитие икринок, которое может длиться от 4 до 9 дней. Плодовитость составляет от 5 000 до 100 000 икринок. Отмечается, что икринок может быть больше [5]. Стерлядь может скрещиваться с другими представителями осетровых (осетр, белуга) [8]. Нерестится стерлядь не каждый год. Так, у стерляди Обского бассейна отмечен перерыв между нерестами в 2 и более года [16]. Отмечается, что стерлядь Acipenser ruthenus (Linnaeus, 1758) имеет подвид — сибирская стерлядь Acipenser ruthenus marsiglii (Brandt, 1833). Основными морфологическими отличиями подвида являются большее число жаберных тычинок на первой жаберной дуге от 17 до 24 (у стерляди от 16 до 21) (табл.) [17], более темная окраска тела, более притупленные спинные жучки, усики длиннее и тоньше, бахромки короче [18]. Некоторые отличительные морфологические признаки стерляди и сибирской стерляди* Признак** A. ruthenus A. ruthenus marsiglii D 32-49 38-54 A 16-34 21-31 sd 11-18 12-17 sl 56-71 57-67 sv 10-20 11-18 sp.br 16-21 17-24 * Составлено по [17, 5]. ** D — число лучей в спинном плавнике; А — число лучей в анальном плавнике; sd — число спинных жучек; sl — число боковых жучек; sv — число брюшных жучек; sp.br — число тычинок на первой жаберной дуге. Одним из простых инструментов оценки родства является коэффициент различия (СD). Для выделения подвида достаточно, если СD ≥ 1,28. Подобная ситуация наблюдается по таким признакам, как количество лучей в анальном плавнике, количестве жаберных тычинок. Есть мнение, что эти различия объясняются пластичностью вида, тем не менее, их нельзя игнорировать, по этой причине вопрос о таксономическом статусе сибирской стерляди остается открытым и требует дальнейшего изучения [2]. Установлено, что в искусственных условиях выживаемость и продуктивность подвида выше или как минимум не уступает обычной стерляди, что может быть связано с различием в физиологических процессах [19]. Сибирская стерлядь водится в крупных реках Сибири: Оби, Иртыше и Енисее, — а далее на восток (Пясна, Хатанга, Лена, Колыма и др.) не встречается [12]. В пределах Иртышского бассейна у сибирской стерляди выделяют несколько локальных стад: уватское, тобольское и тарское [20]. Сибирская стерлядь становится половозрелой на 1-2 года позже обычной стерляди [5], т. к. рост ее более медленный, что, видимо, связано с температурным режимом [21]. В настоящее время происходит падение численности стерляди и осетровых в целом. Причину резкого падения числа осетровых пытались объяснять в 70-е гг. их морфологическим и экологическим консерватизмом, который не позволяет выдержать конкуренцию с прочими филогенетически молодыми видами [16]. В настоящее время причины выделяются следующие: сброс загрязненных вод, мешающих распространению стерляди [13]; плотины, оборудованные подъемниками с низким коэффициентом полезного действия, преграждающие пути миграции; отсутствие должного контроля над промышленным рыболовством; браконьерство; устаревшие правила и госты рыбоводческой деятельности [20]; конкурентные взаимоотношения с лещом за места нагула в русловой зоне, т. к. спектр питания леща схож со спектром питания осетровых [22, 23]. Для восстановления численности стерляди организуется искусственное воспроизводство [10]. Ныне стерлядь занесена в «Красную книгу Российской Федерации» — Категория: 1 — отдельные популяции широко распространенного вида, находящиеся под угрозой исчезновения — и «Красную книгу Международного союза охраны природы». Предпринимаются попытки сокращения нелегального вылова. Так, для сохранения стерляди Тюменской области в 2015 г. вышел приказ об ограничении рыболовства стерляди. На р. Иртыш выделено 20 зимовальных ям, на которых запрещен любой вид рыболовства круглогодично [11, 24, 25]. Заключение Таким образом, стерлядь является довольно пластичным видом, что обусловлено ее образом жизни, питанием, особенностями размножения, распространения. Несмотря на свою пластичность, стерлядь страдает от браконьерства, перекрытий нерестовых участков гидростроительством и другой антропогенной нагрузки, в связи с чем численность ее подорвана и требует увеличения объемов искусственного воспроизводства и усиления мер охраны с целью восстановления численности вида. В одном водоеме стерлядь может иметь несколько, достаточно различных по морфологическим признакам, стад. Иногда морфологические признаки настолько различны, что целесообразно поднять вопрос о выделении подвидов, как это происходит с сибирской стерлядью. Но для точного установления таксономической принадлежности требуются дальнейшие исследования по биологии, морфологии и филогении стерляди и осетровых в целом.

Идентификация трансферрина в репродуктивной системе стерляди (Acipenser ruthenus)

. 2019 сен 30;9(10):753.

дои: 10.3390/ani9100753.

Мяомяо Синь
¹

2
, Павлина Вехтова
³

4
, Анна Шалютина-Колесова
⁵
, Золтан Фасси
⁶
, Дмитрий Логинов
⁷

8
, Борис Дзюба
⁹
, Отомар Линхарт
¹⁰
, Сергей Борышполец
¹¹
, Марек Родина
¹²
, Пин Ли
¹³

14
, Яна Логинова
¹⁵
, Ян Стерба
¹⁶

17

Принадлежности

• ¹ Южночешский научно-исследовательский центр аквакультуры и биоразнообразия гидроценозов, Научно-исследовательский институт рыбоводства и гидробиологии, Факультет рыбного хозяйства и охраны вод, Южночешский университет в Ческе-Будеёвице, Zatisi 728/II, 38925 Водняны, Чехия. [email protected].
• ² Китайско-чешская совместная лаборатория сохранения рыбы и биотехнологии: Ключевая лаборатория сохранения пресноводного биоразнообразия, Министерство сельского хозяйства Китая, Научно-исследовательский институт рыболовства реки Янцзы, Китайская академия рыбохозяйственных наук, Ухань 430223, Китай. [email protected].
• ³ Институт химии, Факультет естественных наук, Южночешский университет в Ческе-Будеёвице, Бранисовска 1760, 37005 Ческе-Будеевице, Чехия. [email protected].
• ⁴ Биологический центр Академии наук Чешской Республики, Институт паразитологии, Бранисовска 31, 37005 Ческе-Будеёвице, Чешская Республика. [email protected].
• ⁵ Южночешский научно-исследовательский центр аквакультуры и биоразнообразия гидроценозов, Научно-исследовательский институт рыбоводства и гидробиологии, Факультет рыбного хозяйства и охраны вод, Южночешский университет в Ческе-Будеевицах, Zatisi 728/II, 38925 Водняны, Чехия. [email protected].
• ⁶ Институт химии, Факультет естественных наук, Южночешский университет в Ческе-Будеёвице, Бранисовска 1760, 37005 Ческе-Будеевице, Чехия. золтан.фусси@gmail.com.
• ⁷ Институт химии, Факультет естественных наук, Южночешский университет в Ческе-Будеёвице, Бранисовска 1760, 37005 Ческе-Будеевице, Чехия. [email protected].
• ⁸ Биологический центр Академии наук Чешской Республики, Институт паразитологии, Бранисовска 31, 37005 Ческе-Будеёвице, Чешская Республика. [email protected].
• ⁹ Южночешский научно-исследовательский центр аквакультуры и биоразнообразия гидроценозов, Научно-исследовательский институт рыбоводства и гидробиологии, Факультет рыбного хозяйства и охраны вод, Южночешский университет в Ческе-Будеевицах, Zatisi 728/II, 38925 Водняны, Чехия. [email protected].
• ¹⁰ Южночешский научно-исследовательский центр аквакультуры и биоразнообразия гидроценозов, Научно-исследовательский институт рыбоводства и гидробиологии, Факультет рыболовства и охраны вод, Южночешский университет в Ческе-Будеевицах, Затиси 728/II, 389 25 Водняны, Чехия . [email protected].
• ¹¹ Южночешский научно-исследовательский центр аквакультуры и биоразнообразия гидроценозов, Научно-исследовательский институт рыбоводства и гидробиологии, Факультет рыбного хозяйства и охраны вод, Южночешский университет в Ческе-Будеёвице, Zatisi 728/II, 38925 Водняны, Чехия. [email protected].
• ¹² Южночешский научно-исследовательский центр аквакультуры и биоразнообразия гидроценозов, Научно-исследовательский институт рыбоводства и гидробиологии, Факультет рыболовства и охраны вод, Южночешский университет в Ческе-Будеёвице, Затиси 728/II, 389 25 Водняны, Чехия . [email protected].
• ¹³ Южночешский научно-исследовательский центр аквакультуры и биоразнообразия гидроценозов, Научно-исследовательский институт рыбоводства и гидробиологии, Факультет рыбного хозяйства и охраны вод, Южночешский университет в Ческе-Будеёвице, Zatisi 728/II, 38925 Водняны, Чехия. [email protected].
• ¹⁴ Морской колледж Шаньдунского университета (Вэйхай), Вэйхай 264209, Шаньдун, Китай. [email protected].
• ¹⁵ Институт химии, Факультет естественных наук, Южночешский университет в Ческе-Будеёвице, Бранисовска 1760, 37005 Ческе-Будеевице, Чехия. [email protected].
• ¹⁶ Институт химии, Факультет естественных наук, Южночешский университет в Ческе-Будеёвице, Бранисовска 1760, 37005 Ческе-Будеевице, Чехия. [email protected].
• ¹⁷ Биологический центр Академии наук Чешской Республики, Институт паразитологии, Бранисовска 31, 37005 Ческе-Будеевице, Чехия. [email protected].

• PMID:

  31575042

• PMCID:

  PMC6826671

• DOI:

  10.3390/ани9100753

Бесплатная статья ЧВК

Мяомиао Синь и др.

Животные (Базель).

2019 .

Бесплатная статья ЧВК

. 2019 сен 30;9(10):753.

дои: 10.3390/ani9100753.

Авторы

Мяомяо Синь
¹

2
, Павлина Вехтова
³

4
, Анна Шалютина-Колесова
⁵
, Золтан Фусси
⁶
, Дмитрий Логинов
⁷

8
, Борис Дзюба
⁹
, Отомар Линхарт
¹⁰
, Сергей Борышполец
¹¹
, Марек Родина
¹²
, Пин Ли
¹³

14
, Яна Логинова
¹⁵
, Ян Стерба
¹⁶

17

Принадлежности

• ¹ Южночешский научно-исследовательский центр аквакультуры и биоразнообразия гидроценозов, Научно-исследовательский институт рыбоводства и гидробиологии, Факультет рыболовства и охраны вод, Южночешский университет в Ческе-Будеевицах, Затиси 728/II, 389 25 Водняны, Чешская Республика. [email protected].
• ² Китайско-чешская совместная лаборатория сохранения рыбы и биотехнологии: Ключевая лаборатория сохранения пресноводного биоразнообразия, Министерство сельского хозяйства Китая, Научно-исследовательский институт рыболовства реки Янцзы, Китайская академия рыбохозяйственных наук, Ухань 430223, Китай. [email protected].
• ³ Институт химии, Факультет естественных наук, Южночешский университет в Ческе-Будеёвице, Бранисовска 1760, 37005 Ческе-Будеевице, Чехия. [email protected].
• ⁴ Биологический центр Академии наук Чешской Республики, Институт паразитологии, Бранисовска 31, 37005 Ческе-Будеёвице, Чешская Республика. [email protected].
• ⁵ Южночешский научно-исследовательский центр аквакультуры и биоразнообразия гидроценозов, Научно-исследовательский институт рыбоводства и гидробиологии, Факультет рыбного хозяйства и охраны вод, Южночешский университет в Ческе-Будеевицах, Zatisi 728/II, 38925 Водняны, Чехия. [email protected].
• ⁶ Институт химии, Факультет естественных наук, Южночешский университет в Ческе-Будеёвице, Бранисовска 1760, 37005 Ческе-Будеевице, Чехия. золтан.фусси@gmail.com.
• ⁷ Институт химии, Факультет естественных наук, Южночешский университет в Ческе-Будеёвице, Бранисовска 1760, 37005 Ческе-Будеевице, Чехия. [email protected].
• ⁸ Биологический центр Академии наук Чешской Республики, Институт паразитологии, Бранисовска 31, 37005 Ческе-Будеёвице, Чешская Республика. [email protected].
• ⁹ Южночешский научно-исследовательский центр аквакультуры и биоразнообразия гидроценозов, Научно-исследовательский институт рыбоводства и гидробиологии, Факультет рыбного хозяйства и охраны вод, Южночешский университет в Ческе-Будеевицах, Zatisi 728/II, 38925 Водняны, Чехия. [email protected].
• ¹⁰ Южночешский научно-исследовательский центр аквакультуры и биоразнообразия гидроценозов, Научно-исследовательский институт рыбоводства и гидробиологии, Факультет рыболовства и охраны вод, Южночешский университет в Ческе-Будеевицах, Затиси 728/II, 389 25 Водняны, Чехия . [email protected].
• ¹¹ Южночешский научно-исследовательский центр аквакультуры и биоразнообразия гидроценозов, Научно-исследовательский институт рыбоводства и гидробиологии, Факультет рыбного хозяйства и охраны вод, Южночешский университет в Ческе-Будеёвице, Zatisi 728/II, 38925 Водняны, Чехия. [email protected].
• ¹² Южночешский научно-исследовательский центр аквакультуры и биоразнообразия гидроценозов, Научно-исследовательский институт рыбоводства и гидробиологии, Факультет рыболовства и охраны вод, Южночешский университет в Ческе-Будеёвице, Затиси 728/II, 389 25 Водняны, Чехия . [email protected].
• ¹³ Южночешский научно-исследовательский центр аквакультуры и биоразнообразия гидроценозов, Научно-исследовательский институт рыбоводства и гидробиологии, Факультет рыбного хозяйства и охраны вод, Южночешский университет в Ческе-Будеёвице, Zatisi 728/II, 38925 Водняны, Чехия. [email protected].
• ¹⁴ Морской колледж Шаньдунского университета (Вэйхай), Вэйхай 264209, Шаньдун, Китай. [email protected].
• ¹⁵ Институт химии, Факультет естественных наук, Южночешский университет в Ческе-Будеёвице, Бранисовска 1760, 37005 Ческе-Будеевице, Чехия. [email protected].
• ¹⁶ Институт химии, Факультет естественных наук, Южночешский университет в Ческе-Будеёвице, Бранисовска 1760, 37005 Ческе-Будеевице, Чехия. [email protected].
• ¹⁷ Биологический центр Академии наук Чешской Республики, Институт паразитологии, Бранисовска 31, 37005 Ческе-Будеевице, Чехия. [email protected].

• PMID:

  31575042

• PMCID:

  PMC6826671

• DOI:

  10.3390/ани9100753

Абстрактный

Трансферрины представляют собой надсемейство железосвязывающих белков и признаны многофункциональными белками. В настоящей работе для идентификации трансферринов в репродуктивных органах и сперме вненерестовой и семеноносной стерляди использовали транскриптомные и протеомные методы (9). 0241 Acipenser ruthenus ) самцы. Результаты показали, что в транскриптоме стерляди было идентифицировано семь транскриптов трансферрина, и эти транскрипты были квалифицированы как два разных гена трансферрина, серотрансферрина и меланотрансферрина, с несколькими изоформами, присутствующими для серотрансферрина. Относительное содержание изоформ серотрансферрина было выше в почках и вольфовых протоках у оплодотворяющих самцов по сравнению с самцами вне нереста. Кроме того, трансферрин иммунодетектирован в семенной плазме стерляди, но не в экстракте сперматозоидов стерляди. Масс-спектрометрическая идентификация трансферрина в семенной плазме, но не в сперматозоидах, подтверждает результаты иммунодетекции. Идентификация трансферрина в репродуктивных органах и семенной плазме стерляди в данном исследовании позволяет говорить о потенциальной функции трансферрина при воспроизводстве самцов осетровых рыб.

Ключевые слова:

вольфов проток; почка; сперма; яички; транскриптом.

Заявление о конфликте интересов

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Цифры

Рисунок 1

Образец тепловой карты корреляционной матрицы, показывающий…

Рисунок 1

Образец тепловой карты корреляционной матрицы, показывающий степень сходства дифференциально выраженного транскрипта…

фигура 1

Тепловая карта матрицы корреляции образцов, показывающая степень сходства дифференциально выраженных кластеров транскриптов между каждым образцом. СМ: сперматозоиды; OOS: вненерестовый; К: почки; ВД: вольфов проток; Т: яички.

Рисунок 2

Филограмма, показывающая родство…

Рисунок 2

Филограмма, показывающая взаимосвязь предполагаемых изоформ трансферрина A. ruthenus с другими изоформами трансферрина…

фигура 2

Филограмма, показывающая родство предполагаемых изоформ трансферрина A. ruthenus с другими последовательностями трансферрина родственных видов рыб и избранных четвероногих. Панель А , меланотрансферрин; , панель B , серотрансферрин. Филограмма ML была выведена с помощью IQ-TREE со стратегией вывода направляющего/финального дерева (PMSF) (см. Материалы и методы). Дерево было укоренено с использованием последовательностей Callorhinchus milii (Chondrichthyes, Chimaeriformes).

Рисунок 3

Относительное содержание серотрансферрина…

Рисунок 3

Относительное содержание (TPM) серотрансферрина ( A ) и меланотрансферрина ( B )…

Рисунок 3

Относительное содержание (ОТМ) транскриптов серотрансферрина ( А ) и меланотрансферрина ( В ) в отдельных органах половозрелых и вненерестовых самцов стерляди. ( A ) также показывает соотношение индивидуальных изоформ серотрансферрина в каждом образце. СМ: сперматозоиды; OOS: вненерестовый; К: почки; ВД: вольфов проток; Т: яички.

Рисунок 4

Репрезентативный белок семенной плазмы стерляди…

Рисунок 4

Репрезентативный белковый профиль семенной плазмы стерляди ( A ), визуализированный с помощью двумерного геля…

Рисунок 4

Репрезентативный белковый профиль семенной плазмы стерляди ( A ), визуализированный двумерным гель-электрофорезом. Иммуноблот семенной плазмы стерляди со специфическими антителами ( B ). Кружками показаны идентифицированные белковые пятна, два из которых были реактивными и подверглись MALDI-TOF/TOF MS. Маркер молекулярного веса находится справа. pI = изоэлектрические точки.

Рисунок 5

Репрезентативные белковые профили сперматозоидов (…

Рисунок 5

Репрезентативные белковые профили сперматозоидов ( A ) стерляди методом двумерного гель-электрофореза.…

Рисунок 5

Типичные профили белков сперматозоидов ( A ) стерляди методом двумерного гель-электрофореза. Вестерн-блот-реакция сперматозоидов стерляди ( B ). Кружками показаны пятна прореагировавшего белка, подвергнутые MALDI-TOF/TOF MS. Маркер молекулярного веса находится справа. pI = изоэлектрические точки.

См. это изображение и информацию об авторских правах в PMC

Похожие статьи

• Влияние температуры окружающей среды и гормональной стимуляции на созревание спермы in vitro у стерляди Acipenser ruthenus в преддверии нереста.

  Дзюба В., Коссон Дж., Пападаки М., Милонас С.С., Штейнбах С., Родина М., Тучкова В., Линхарт О., Шелтон В.Л., Гела Д., Борышполец С., Дзюба Б.
  Дзюба В, и др.
  Животные (Базель). 2021 15 мая; 11 (5): 1417. дои: 10.3390/ани11051417.
  Животные (Базель). 2021.

  PMID: 34063418
  Бесплатная статья ЧВК.

• Подвижность и оплодотворяющая способность тестикулярной спермы стерляди Acipenser ruthenus после криоконсервации.

  Дзюба Б., Борышполец С., Коссон Дж., Дзюба В., Федоров П., Сайто Т., Псеницкая М., Линхарт О., Родина М.
  Дзюба Б и др.
  Криобиология. 2014 г., октябрь; 69 (2): 339-41. doi: 10.1016/j.cryobiol.2014.07.008. Epub 2014 21 июля.
  Криобиология. 2014.

  PMID: 25058859

• Определение годового репродуктивного цикла у самцов стерляди Acipenser ruthenus с помощью гистологического и ультразвукового исследования.

  Голпур А., Брокард С., Милла С., Дадрас Х., Белудж А.Р., Сайто Т., Пшеничка М.
  Голпур А. и др.
  Рыба Физиол Биохим. 2021 июнь;47(3):703-711. doi: 10.1007/s10695-020-00892-8. Epub 2020 5 ноября.
  Рыба Физиол Биохим. 2021.

  PMID: 33155078

• Гистология гонад и профиль 11-КТ сыворотки в течение годового репродуктивного цикла у взрослых самцов стерляди, Acipenser ruthenus.

  Голпур А., Брокард С., Милла С., Дадрас Х., Белудж А.Р., Сайто Т., Пшеничка М.
  Голпур А. и др.
  Репрод Дом Аним. 2017 Апрель; 52 (2): 319-326. doi: 10.1111/rda.12911. Epub 2017 21 января.
  Репрод Дом Аним. 2017.

  PMID: 28109018

  Отодвинут.

• Созревание сперматозоидов у осетровых (Actinopterygii, Acipenseriformes): обзор.

  Дзюба Б., Коссон Дж., Дзюба В., Федоров П., Бондаренко О., Родина М., Линхарт О., Шелтон В. Л., Борышполец С.
  Дзюба Б и др.
  Териогенология. 2017 15 июля; 97: 134-138. doi: 10.1016/j.theriogenology.2017.04.034. Epub 2017 27 апр.
  Териогенология. 2017.

  PMID: 28583596

  Обзор.

Посмотреть все похожие статьи

Цитируется

• Сывороточный амилоид А является положительным острофазовым белком у русского осетра, инфицированного Aeromonas hydrophila.

  Кастеллано М., Сильва-Альварес В., Аверса-Марнаи М., Ламас-Бервехильо М., Квартиани И., Перретта А., Вилларино А., Феррейра АМ.
  Кастеллано М. и др.
  Научный представитель 2020 г. 17 декабря; 10 (1): 22162. doi: 10.1038/s41598-020-79065-9.
  Научный представитель 2020.

  PMID: 33335147
  Бесплатная статья ЧВК.

использованная литература

1. 1. Маккензи Э.Л., Ивасаки К., Цудзи Ю. Внутриклеточный транспорт и хранение железа: от молекулярных механизмов до последствий для здоровья. Антиоксид. Окислительно-восстановительный сигнал. 2014;10:997–1030. doi: 10.1089/ars.2007.1893.

      —

      DOI

      —

      ЧВК

      —

      пабмед

2. 1. Эллис А. Е. Иммунитет рыб к бактериям. Рыбы. Иммунол моллюсков. 1999; 9: 291–308. doi: 10.1006/fsim.1998.0192.

      —

      DOI

3. 1. Стаффорд Дж.Л., Белошевич М. Трансферрин и врожденный иммунный ответ рыб: выявление нового механизма активации макрофагов. Дев. Комп. Иммунол. 2003;2:539–554. doi: 10.1016/S0145-305X(02)00138-6.

      —

      DOI

      —

      пабмед

4. 1. Юрецка П. , Ирназаров И., Стаффорд Дж.Л., Рущик А., Таверн Н., Белошевич М. Индукция ответа макрофагов карпа на оксид азота трансферрином индуцируется аллельным разнообразием молекулы. Рыбы. Иммунол моллюсков. 2009 г.;26:632–638. doi: 10.1016/j.fsi.2008.10.007.

      —

      DOI

      —

      пабмед

5. 1. Ли П., Гулак М., Кубек П., Сульк М., Дзюба Б., Борышполец С., Родина М., Гела Д., Манаскова-Постлерова П., Пекникова Ю. и др. Выносливость к ледниковому периоду: влияние криоконсервации на белки спермы карпа обыкновенного, Cyprinus carpio L. Териогенология. 2010;74:413–423. doi: 10.1016/j.theriogenology.2010. 02.024.

      —

      DOI

      —

      пабмед

Грантовая поддержка

• LM2018099/Министерство образования, молодежи и спорта Чехии — проекты CENAKVA
• CZ.02.1.01./0.0/0.0/16_025/0007370/Биоразнообразие
• № 125/2016/Z/Агентство по грантам Университета Южной Чехии
• 16-02407Y/Чешский научный фонд
• LM2015055/Чешская исследовательская инфраструктура для системной биологии C4SYS

• LM2015042/Министерство образования, молодежи и спорта Чешской Республики в рамках Проектов CESNET
• LM2015085/CERIT-научное облако

Рост и созревание стерляди Acipenser ruthenus в условиях высоких концентраций растворенного кислорода