В Волгу выпущено 380 тысяч мальков четырех видов рыбы

ГАЛЕРЕЯ

В Волгу выпущено 380 тыс. мальков стерляди, толстолобика, белого амура и сазана. Об этом сообщает Балаковская АЭС, по специальному заказу которой эта рыба была выращена в Саратовском питомнике.

«Заселение акватории мальками рыбы, в том числе редких видов, — часть плана природоохранных мероприятий по искусственному воспроизводству водных биологических ресурсов Волги. Программа поэтапного ежегодного зарыбления проводится в соответствии с федеральным законодательством и рассчитана на 10 лет. Стартовали мы в прошлом году. Тогда в общей сложности выпустили более 7 т. рыбы», — сказал начальник участка цеха обеспечивающих систем атомной станции Анвар Бесшапошников.

Как сообщили на предприятии, каждое рыбье «новоселье» тщательно готовится. В питомнике мальки проверяются на соответствие возрасту выживаемости в природных условиях и наличие болезней. К месту выпуска рыбу доставляют на специальном транспорте, оснащенном системой жизнеобеспечения. Температуру воды в контейнерах постепенно выравнивают относительно температуры водоема. По словам специалистов, места для выпуска молоди подбирают так, чтобы в них соблюдались максимально комфортные условия для адаптации и размножения. Выпуск мальков проводился под наблюдением представителей рыбопитомника и Рыбоохраны.

На станции подчеркнули, что экологическая ответственность — важнейший приоритет в работе Балаковской АЭС. Поддержка биологического разнообразия и естественной среды обитания рыбы — одно из направлений природоохранной деятельности атомной станции. Растительноядные виды рыбы помогают воде сохранить чистоту, улучшить волжскую экосистему, а стерлядь считается редким и исчезающим видом рыбы — она занесена в Красную Книгу Саратовской области. Поэтапное зарыбление будет способствовать восстановлению популяции стерляди в Волге.

Добавить в избранные источники Яндекс.Новости и Google Новости

• река Волга,
• Балаковская АЭС,
• мальки

Стали свидетелями интересного?

Снимайте на телефон, присылайте в редакцию, читайте на СарБК.

Картина дня

Еще новости
— Общество

• Сегодня, 10:11

  Общество

  
  COVID-19 за сутки: еще 81 случай, у семерых пневмония 

  
  

• Вчера, 17:35

  Общество

  
  Пенсионерка из Турковского района перевела мошенникам больше миллиона 

  
  

• Вчера, 16:11

  Общество

  
  В почтовых отделениях области начался прием писем для Деда Мороза 

  
  

• Вчера, 14:35

  Общество

  
  Полицейского отправили под домашний арест по делу о коррупции 

  
  

• Вчера, 10:52

  Общество

  
  COVID-19 за сутки: 85 заболевших, четыре — с пневмонией 

  
  

• 2 Дек, 19:11

  Общество

  
  Беженцы из Херсона смогут получить выплату на жилье в области 

  
  

• 2 Дек, 18:54

  Общество

  
  Водитель автобуса дал пинка ребенку. СУ СКР проведет проверку 

  
  

• 2 Дек, 18:32

  Общество

  
  Опрос: стало ли хуже с транспортом в последние недели? 

  
  

• 2 Дек, 17:50

  Общество

  
  Каждый пятый читатель СарБК ждет позитивных сдвигов при Бусаргине 

  
  

• 2 Дек, 17:21

  Общество

  
  Водителю маршрутки объявили выговор за платный провоз коляски 

  
  

• Все новости из ленты

Фокус города

Tele2 проведет прямую трансляцию видеомэппинга с Дворцовой площади

Саратов – Tele2, российский оператор мобильной связи, предлагает жителям и гостям Санкт-Петербурга увидеть вживую финал конкурса современного медиаискусства «Страна света», а зрителям в других городах – посмотреть его в прямом эфире. Заключительный этап. ..

Более 85 тысяч мальков стерляди выпустил «Нижнекамскнефтехим» в Каму — Реальное время

Промышленность

16:26, 29.10.2021

Сюжет: 
ПАО «Нижнекамскнефтехим» – все статьи в бизнес-газете «Реальное время»

ПАО «Нижнекамскнефтехим» вновь пополнило водные биоресурсы. 85 тысяч 616 мальков стерляди выпустили специалисты управления экологической безопасности в Куйбышевское водохранилище вблизи села Бетьки Тукаевского района.

Мальки стерляди были доставлены из московского рыбоводного центра на специальном транспорте, оборудование которого позволяет поддерживать в контейнерах необходимые условия для жизнеобеспечения рыбы. Дорога до места зарыбления заняла более 10 часов.

— Стерлядь — один из видов осетровых, занесенных в Красную книгу. Ловить ее запрещено, — отметил Александр Нуждин, коммерческий директор рыбоводного комплекса ООО «Главрыба». — Малькам около 50 дней. В этом возрасте их можно спокойно выпускать в водоемы. Погодные условия позволяют. Прежде чем выпустить рыбу в Каму, мы доводим температуру воды в контейнере до той, что в реке. Это делается для того, чтобы у рыбы не было климатического шока. Вся процедура занимает примерно 1,5—2 часа.

К слову, это второй этап работ по зарыблению Куйбышевского водохранилища «Нижнекамскнефтехимом». Первый проходил в сентябре 2021 года. Тогда нефтехимики выпустили 40 тысяч штук стерляди. Общее количество выпущенных мальков в 2021 году составило 125 тысяч 616 штук. Это более 4 тонн рыбоводной продукции.

— Это экологическое компенсационное мероприятие входит в нашу новую пятую экологическую программу, которую мы приняли на 5 лет. Цель выпуска рыбы — сохранение водных биологических ресурсов и среды обитания, — пояснила начальник отдела охраны окружающей среды управления экологической безопасности ПАО «Нижнекамскнефтехим» Светлана Ямкова.

По словам Светланы Ямковой, на балансе предприятия находится водозабор, который расположен в поселке Красный Ключ и предназначен для забора воды для технических нужд «Нижнекамскнефтехима», а также обеспечения хозпитьевой водой жителей Нижнекамска. В 2010 году здесь было установлено эффективное рыбозащитное устройство, позволяющее минимизировать вред биоресурсам, но это не исключает вероятности попадания личинок и молоди рыб, кормовой базы — фитопланктона, зоопланктона и зообентоса — в водозаборное устройство. Поэтому предприятие ежегодно восполняет водные биоресурсы. Количество выпускаемой рыбы зависит от объемов забранной воды из водоема.

— Мы совместно, с привлечением федерального научного учреждения и Росрыболовства, проводим работу по определению, какой объем рыбы и каких сортов наше предприятие должно выпустить в водоем. Если в предыдущие годы мы выпускали мальков сазана, в этом году впервые выпускаем стерлядь. На тендерной основе определяется прудовое хозяйство, которое выращивает для нас мальков рыбы, место для их выпуска определяет Росрыболовство. Для этого учитываются благоприятные природные условия, кормовая база, чтобы рыба прижилась, — рассказала Светлана Ямкова.

Процедуру выпуска молоди контролировали специалисты управления экологической безопасности компании совместно с представителями Средневолжского территориального управления Росрыболовства. Комиссия подтвердила удовлетворительное состояние мальков перед выпуском и соблюдение всех требований к условиям его проведения.

Восполнение биоресурсов для «Нижнекамскнефтехима», входящего в объединенную компанию СИБУР, является важной составляющей природоохранных мероприятий, проводимых на предприятии.

Партнерский материал

ПромышленностьНефтехимия Татарстан Нижнекамскнефтехим

Пилотное зарыбление русского осетра и стерляди в Румынии и Венгрии, 18 апреля

Опубликовано 18 апреля 2019 г.

Осетровые и другие мигрирующие виды рыб представляют собой историческое, экономическое и природное наследие Дуная.

Апрель 2019 г.: В этом месяце произошло обогащение фауны реки Дунай. 18 апреля ^года года в Бахе (Венгрия) и Исакче (Румыния) состоялись два важных мероприятия по зарыблению осетровых рыб. Эти мероприятия проводились в рамках проекта МЕРЫ (Управление и восстановление водных экологических коридоров для мигрирующих видов рыб в бассейне реки Дунай).

Целью данного мероприятия было сохранение и укрепление двух находящихся под угрозой исчезновения популяций дунайского осетра с помощью современных методов сохранения. Зарыбление стерляди ( Acipenser ruthenus ) происходило в Венгрии, а русского осетра ( Acipenser gueldenstaedtii ) в Румынии. Рыба была помечена, чтобы ее можно было идентифицировать в случае повторной поимки в ходе исследований на месте, а также для оценки выживаемости выпущенных особей. Это даст ценную информацию для более крупных планов зарыбления в будущем.

Осетровые и другие мигрирующие виды рыб представляют собой историческое, экономическое и природное наследие Дуная. Кроме того, они являются индикаторами экологического состояния речных водотоков, особенно в отношении функции реки как экологического коридора. Фрагментация рек поперечными сооружениями, такими как плотины гидроэлектростанций или меры по защите от наводнений, представляет угрозу для естественных популяций рыб, если они больше не могут достигать важных местообитаний, таких как нерестилища , места нагула и зимовки. Транснациональные действия по управлению и восстановлению для восстановления этих коридоров в качестве путей миграции, а также зарыбление местными видами необходимы до тех пор, пока мы снова не достигнем самоподдерживающейся популяции.

«Консервативное пополнение запасов является одним из многих необходимых действий по спасению находящихся под угрозой исчезновения рыб. В сочетании с обеспечением и восстановлением среды обитания важно увеличить количество животных видов и популяций, находящихся на грани исчезновения», говорит Томас Фридрих, Университет природных ресурсов и наук о жизни, Вена.

Мероприятия были организованы проектом МЕРЫ, софинансируемым Европейским Союзом (ERDF, IPA). Для получения дополнительной информации посетите веб-сайт проекта: www.interreg-danube.eu/measures.

Для получения дополнительной информации:
Paul Meulenbroek , руководитель проекта,
Университет природных ресурсов и наук о жизни, Вена,
paul. [email protected]
 
M ădălina Corciu , менеджер по коммуникации,
WWF DCP Romania
[email protected]

О проекте
(01.06.2018-31.05.2021). , Словакия, Словения, Венгрия, Хорватия, Сербия, Румыния и Болгария). Партнеры по проекту объединили усилия для сохранения находящихся под угрозой исчезновения мигрирующих видов рыб в бассейне реки Дунай (DRB). В течение трех лет проекта MEASURES будет картировать и определять ключевые места обитания, разрабатывая и тестируя методологию картирования местообитаний мигрирующих рыб, разрабатывать согласованную стратегию восстановления экологических коридоров и поддерживать включение в будущие планы управления. В рамках проекта также будет создана онлайновая база данных — «Информационная система МЕР», которая облегчит доступ экспертов, лиц, принимающих решения, и широкой общественности к имеющейся соответствующей информации.

Влияние плотности посадки на показатели роста и стрессовые реакции молоди Bester и Bester ♀ × Beluga ♂ в замкнутых системах аквакультуры

1. Yang D., Ma G., Sun D. Разведение осетровых рыб: состояние и практика. В: Gui JF, Tang Q., Li Z., Liu J., De Silva S.S., редакторы. Аквакультура в Китае: истории успеха и современные тенденции. Издательство Джона Вили и сыновей; Чичестер, Великобритания: 2018. стр. 234–245. [Google Scholar]

2. Васильева Л.М., Эльхетави А.И., Судакова Н.В., Астафьева С.С. История, современное состояние и перспективы аквакультуры осетровых рыб в России. Аква. Рез. 2019;50:979–993. doi: 10.1111/are.13997. [CrossRef] [Google Scholar]

3. Васильева Л.М., Судакова Н.В. Биотехнологические основы товарного осетроводства. Издательство АГУ; Астрахань, Россия: 2014. 247 с. [Google Scholar]

4. Пономарева Е.Н., Белая М.М. Стерлядь современная Acipenser ruthenus Содержание маточного стада на юге России. Мир Аква. 2013;44:55–59. [Google Scholar]

5. Мюррей Ф., Босток Дж., Флетчер Д. Обзор технологий рециркуляционных систем аквакультуры и их коммерческое применение. Стерлингский университет аквакультуры; Стерлинг, Великобритания: 2014. [Google Scholar] 9.0005

6. Игучи К., Огава К., Нагае М., Ито Ф. Влияние плотности выращивания на реакцию на стресс и восприимчивость к болезням аю ( Plecoglossus altivelis ) Аквакультура. 2003; 220: 515–523. doi: 10.1016/S0044-8486(02)00626-9. [CrossRef] [Google Scholar]

7. Бауэр О.Н., Пугачев О.Н., Воронин В.Н. Изучение паразитов и болезней осетровых рыб России: обзор. Дж. Заявл. Ихтиол. 2002; 18: 420–429. doi: 10.1046/j.1439-0426.2002.00422.x. [CrossRef] [Академия Google]

8. Панкхерст Н.В., Ван Дер Краак Г. Доказательства того, что острый стресс ингибирует стероидогенез яичников у радужной форели in vivo, благодаря действию кортизола. Генерал Комп. Эндокринол. 2000; 117: 235–237. doi: 10.1006/gcen.1999.7401. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

9. Дорошов С.И., Моберг Г.П., ван Эненнаам Дж.П. Наблюдения за репродуктивным циклом культивируемой белуги Acipenser transmontanus. Окружающая среда. биол. Рыбы. 2002; 48: 265–278. doi: 10.1023/A:1007336802423. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

10. Бронци П., Чебанов М., Майклс Дж.Т., Вей К., Розенталь Х., Гесснер Дж. Производство мяса и икры осетровых рыб: глобальное обновление 2017 г. J. Appl. Ихтиол. 2019;35:257–266. doi: 10.1111/jai.13870. [CrossRef] [Google Scholar]

11. Лопес А., Васкони М., Беллагамба Ф., Ментасти Т., Моретти В.М. Качество мяса и икры осетровых рыб различных культивируемых видов. Рыбы. 2020;5:9. doi: 10.3390/fishes5010009. [CrossRef] [Google Scholar]

12. Чебанов М.С., Галич Е.В. Руководство по разведению осетровых рыб. Продовольственная и сельскохозяйственная организация Объединенных Наций; Анкара, Турция: 2011. 338 стр. [Google Scholar]

13. Wuertz S., Gaillard S., Barbisan F., Carle S., Congiu L., Forlani A., Aubert J., Kirschbaum F., Tosi E., Zane L., et al. Обширный скрининг геномов осетровых с помощью методов случайного скрининга не выявил полового маркера. Аквакультура. 2006; 258: 685–688. doi: 10.1016/j.aquaculture.2006.03. 042. [CrossRef] [Google Scholar]

14. Барадаран Н.С., Бахмани М., Абдолхай Х., Хоссейни М.Р., Чакмедуз Ф., Халладжян А., Дарвиши С., Фараби М.В. Производство бестер (белуга ♀ × стерлядь ♂) и сравнение их роста с белугой в Иране. Иранский научно-исследовательский институт рыболовства; Тегеран, Иран: 2009 г.. 55p [Google Scholar]

15. Жаркенов Д., Пекли Ю., Киричрко О., Зсуга К., Садыкулов Т. Садковое выращивание бестера в Восточном Казахстане. Колумелла Дж. Окружающая среда. Агр. науч. 2016;3:55–63. doi: 10.18380/SZIE.COLUM.2016.3.1.55. [CrossRef] [Google Scholar]

16. Бурцев И.А. Бестер в аквакультуре. В: Бирштейн В. Дж., Бауэр А., Кайзер-Польманн А., редакторы. Семинар по торговле осетровыми запасами и икрой. МСОП; Гланд, Швейцария: Кембридж, Великобритания: 1995. Периодическая статья Комиссии по выживанию видов МСОП (SSC) № 17. [Google Scholar]

17. Каземи Р., Ярмохаммади М., Халладжян А., Тизкар Б. Определение пола и стадий половой зрелости выращенного белуги ( Huso huso ) с использованием соотношения половых стероидов в плазме крови. Иран. Дж. Фиш. науч. 2020;19:2185–2198. doi: 10.22092/ijfs.2020.122235. [CrossRef] [Google Scholar]

18. Монтеро Д., Искьердо М.С., Торт Л., Робайна Л., Вергара Дж.М. Высокая плотность посадки вызывает стресс скученности, изменяющий некоторые физиологические и биохимические параметры у дорады, Sparus aurata , молодые особи. Рыбная физиол. Биохим. 1999; 20:53–60. doi: 10.1023/A:1007719928905. [CrossRef] [Google Scholar]

19. Конте Ф.С. Стресс и благополучие культивируемых рыб. заявл. Аним. Поведение науч. 2004; 86: 205–223. doi: 10.1016/j.applanim.2004.02.003. [CrossRef] [Google Scholar]

20. Норт Б.П., Тернбулл Дж.Ф., Эллис Т., Портер М.Дж., Миго Х., Брон Дж., Бромейдж Н.Р. Влияние плотности посадки на благополучие радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ) Аквакультура. 2006; 255:466–479. doi: 10.1016/j.aquaculture.2006.01.004. [CrossRef] [Google Scholar]

21. Lupatsch I., Santos G.A., Schrama J.W., Verreth J.A.J. Влияние плотности посадки и уровня кормления на расход энергии и реакцию на стресс у европейского морского окуня Dicentrarchus labrax . Аквакультура. 2010; 298: 245–250. doi: 10.1016/j.aquaculture.2009.11.007. [CrossRef] [Google Scholar]

22. Тернбулл Дж., Белл А., Адамс С., Брон Дж., Хантингфорд Ф. Плотность посадки и благополучие атлантического лосося, выращиваемого в садках: применение многофакторного анализа. Аквакультура. 2005; 243:121–132. doi: 10.1016/j.aquaculture.2004.090,022. [CrossRef] [Google Scholar]

23. Ni M., Wen H., Li J., Chi M., Bu Y., Ren Y., Zhang M., Song Z., Ding H. The Physiological Performance and Иммунный ответ молоди амурского осетра ( Acipenser schrenckii ) на плотность посадки и гипоксический стресс. Рыбы. Иммунол моллюсков. 2014;36:325–335. doi: 10.1016/j.fsi.2013.12.002. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

24. Хасаналипур А., Эагдери С., Поорбагер Х., Бахмани М. Влияние плотности посадки на уровень кортизола, глюкозы и холестерина в крови неполовозрелого сибирского осетра ( Acipenser baerii Brandt, 1869) тюрк. Дж. Фиш. Аква. науч. 2013; 13:1–6. doi: 10.4194/1303-2712-v13_1_04. [CrossRef] [Google Scholar]

25. Рафатнежад С., Фалахаткар Б., Гилани М.Х.Т. Влияние плотности посадки на гематологические параметры, рост и эрозию плавников молоди белуги ( Huso huso ). Аква. Рез. 2008; 39: 1506–1513. doi: 10.1111/j.1365-2109.2008.02020.x. [CrossRef] [Google Scholar]

26. Джодун В.А., Миллард М.Дж., Молер Дж. Влияние плотности выращивания на рост, выживание и конверсию корма молоди атлантического осетра. Н. Ам. Дж. Аквак. 2002; 64:10–15. doi: 10.1577/1548-8454(2002)064<0010:TEORDO>2.0.CO;2. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

27. Заре Р., Бахмани М., Явари В., Казими Р., Паша Х., Пурдегани М., Фазели Н., Юнезаде Б., Натеги С.А. Влияние плотности выращивания на показатели роста и коэффициент конверсии пищи сибирского осетра ( Acipenser baeri Brandt) Азиатская рыба. науч. 2009; 22:107–115. doi: 10.33997/j.afs.2009.22.1.010. [CrossRef] [Google Scholar]

28. Челиккале М.С., Мемис Д. , Эркан Э., Кагилтай Ф. Показатели роста молоди русского осетра ( Acipenser gueldenstaedtii Brandt & Ratzenburg, 1833) в разделе «Две плотности посадки в сетчатых садках». Дж. Заявл. Ихтиол. 2005; 21:14–18. doi: 10.1111/j.1439-0426.2004.00567.x. [CrossRef] [Google Scholar]

29. Vasilean I., Cristea V., Sfetcu L. Влияние плотности посадки и параметров воды на рост молоди белуги ( Huso huso , Linnaeus, 1758) Bull. УАСВМ Аним. науч. Биотехнолог. 2009; 52: 666–671. [Google Scholar]

30. Аалимахмуди М., Баварсад С.С., Могдани С. Влияние различной плотности посадки на гематологические и биохимические показатели молоди белуги ( Huso huso Линней, 1758) Res. мнение Аним. Вет. науч. 2015;5:348–352. [Google Scholar]

31. Ирани А., Агх Н. Оптимизация плотности посадки белуги ( Huso huso ) и персидского осетра ( Acipenser persicus ). Дж. Фиш. науч. Технол. 2019;8:15–22. [Google Scholar]

32. Баюнова Л., Баранникова И., Семенкова Т. Стрессовые реакции осетровых рыб в аквакультуре. Дж. Заявл. Ихтиол. 2002; 18: 397–404. doi: 10.1046/j.1439-0426.2002.00410.x. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

33. Лонг Л., Чжан Х., Ни К., Лю Х., Ву Ф., Ван Х. Влияние плотности посадки на рост, стресс и иммунные реакции молоди китайского осетра ( Acipenser sinensis ) в замкнутая система аквакультуры. Комп. Биохим. Физиол. Часть С Токсикол. Фармакол. 2019;219:25–34. doi: 10.1016/j.cbpc.2019.02.002. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

34. Бартон Б.А. Стресс у рыб: разнообразие ответов с особым упором на изменения в циркулирующих кортикостероидах. интегр. Комп. биол. 2002; 42: 517–525. дои: 10.1093/icb/42.3.517. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

35. Лоуренс Д.А., Эллиот Р.Ф., Донофрио М.К., Патрик С.Ф. Производство и поведение личинок озерного осетра в реках Меномини и Оконто, штат Висконсин. Экол. Свежий Рыбы. 2020; 29: 722–738. doi: 10.1111/eff.12549. [CrossRef] [Google Scholar]

36. Фалахаткар Б., Пурсаид С. Реакция большого осетра Huso huso на стресс при воздействии сельскохозяйственных стрессоров. Аква. Междунар. 2013;21:947–959. doi: 10.1007/s10499-012-9566-9. [CrossRef] [Google Scholar]

37. Фешалами М.Ю., Мозанзаде М.Т., Амири Ф., Мортезавизаде С.С., Гисберт Э. Оптимальная плотность посадки белуги, Huso huso , и шипа, Acipenser nudiventris во время Grow-9001 вне фазы. Дж. Заявл. Ихтиол. 2019;35:303–306. doi: 10.1111/jai.13821. [CrossRef] [Google Scholar]

38. Щепковски М., Щепковска Б., Пиотровска И. Влияние более высокой плотности посадки молоди атлантического осетра, Acipenser oxyrinchus Митчилл, о росте рыб, потреблении кислорода и выделении аммиака. Рыбы. Аква. Жизнь. 2011;19:59–67. doi: 10.2478/v10086-011-0007-6. [CrossRef] [Google Scholar]

39. Yang D.G., Zhu Y.J., Luo Y.P., Zhao J.H., Chen J.W. Влияние плотности посадки на показатели роста молоди амурского осетра ( Acipenser schrenckii ) J. Appl. Ихтиол. 2009; 27: 541–544. doi: 10.1111/j.1439-0426.2011.01705.x. [CrossRef] [Google Scholar]

40. Ni M., Wen H., Li J., Chi M., Bu Y., Ren Y., Zhang M., Song Z., Ding H. Влияние плотности посадки на смертность, рост и физиологию молоди амурского осетра ( Acipenser schrenckii ) Aquac. Рез. 2014;47:1596–1604. doi: 10.1111/are.12620. [CrossRef] [Google Scholar]

41. Shaluei F., Hedayati A., Jahanbakhshi A., Baghfalaki M. Физиологические реакции большого осетра ( Huso huso ) на различные концентрации 2-феноксиэтанола в качестве анестетика. Рыбная физиол. Биохим. 2012; 38:1627–1634. doi: 10.1007/s10695-012-9659-4. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

42. Свобода З., Правола Д., Палацкова Ю. Унифицированные методы гематологического исследования рыб. НИИ рыбоводства и гидробиологии; Воднары, Чехословакия: 1991. [Google Scholar]

43. Гессер Е.Ф. Методы рутинной гематологии рыб. Прогресс. Культ рыбы. 1960; 22: 164–171. doi: 10.1577/1548-8659(1960)22[164:MFRFH]2. 0.CO;2. [CrossRef] [Google Scholar]

44. Haney D.C., Hursh D.A., Mix M.C., Winton J.R. Физиологические и гематологические изменения у кеты, искусственно инфицированной вирусом некроза эритроцитов. Дж. Аква. Аним. Здоровье. 1992; 4: 48–57. doi: 10.1577/1548-8667(1992)004<0048:PAHCIC>2.3.CO;2. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

45. Draper H.H., Hadley M. Определение малонового диальдегида как индекса перекисного окисления липидов. Методы Энзимол. 1990;186:421–431. doi: 10.1016/0076-6879(90)86135-i. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

46. Болдуин Л. Дж. Влияние плотности посадки на благополучие рыб. Плимут Стад. науч. 2010;4:372–383. [Google Scholar]

47. Акеч Б.О., Анжиенда П.О., Радулл Дж.О., Вайнди Е.Н. Влияние плотности посадки на экспрессию белка-переносчика глюкозы 1 и других физиологических факторов у нильской тиляпии озера Виктория, Oreochromis niloticus (L.) Int. Аква. Рез. 2014; 6:1–8. doi: 10.1007/s40071-014-0069-3. [CrossRef] [Google Scholar]

48. Saillant E., Fostier A., ​​Haffray P., Menu B., Laureau S., Thimonier J., Chatain B. Влияние плотности выращивания, градации размера и родительских факторов на пол Соотношения морского окуня ( Dicentrarchus labrax L.) в интенсивной аквакультуре. Аквакультура. 2003; 221:183–206. doi: 10.1016/S0044-8486(02)00539-2. [CrossRef] [Google Scholar]

49. Эллис Т., Норт Б., Скотт А.П., Бромейдж Н.Р., Портер М., Гэдд Д. Взаимосвязь между плотностью посадки и благополучием выращиваемой радужной форели. Дж. Фиш Биол. 2002;61:493–531. doi: 10.1111/j.1095-8649.2002.tb00893.x. [CrossRef] [Google Scholar]

50. Ашагри Г., Абебе Г., Менгисту С. Влияние плотности посадки на показатели роста и урожайность нильской тиляпии ( Oreochromis niloticus L., 1758) в системе садкового выращивания на озере Курифту, Эфиопия. Аква. Рез. 2008; 39:1450–1460. doi: 10.1111/j.1365-2109.2008.02021.x. [CrossRef] [Google Scholar]

51. Аксунгур Н., Аксунгур М., Акбулут Б. Влияние плотности посадки на показатели роста, выживаемость и коэффициент пищевой конверсии палтуса ( Psetta Maxima ) в сетчатых садках на юго-восточном побережье Черного моря. Турок. Дж. Фиш. Аква. науч. 2007; 7: 147–152. [Google Scholar]

52. Ламберт Ю., Дутил Дж. Д. Потребление пищи и рост взрослой атлантической трески ( Gadus morhua L.), выращенной в различных условиях плотности посадки, частоты кормления и размерной классификации. Аквакультура. 2001; 192: 233–247. doi: 10.1016/S0044-8486(00)00448-8. [CrossRef] [Google Scholar]

53. Сломан К.А., Уилсон Л., Фрил Дж.А., Тейлор А.С., Меткалф Н.Б., Гилмор К.М. Влияние увеличения скорости потока на линейную иерархию доминирования и физиологические функции у кумжи, Салмо трутта . Можно. Дж. Зул. 2002; 80: 1221–1227. doi: 10.1139/z02-105. [CrossRef] [Google Scholar]

54. Clauss T.M., Dove A.D., Arnold J.E. Гематологические заболевания рыб. Вет. клин. Н. Ам. Экзот. Аним. Практика. 2008; 11: 445–462. doi: 10.1016/j.cvex.2008.03.007. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

55. Файфер С., Мейерс Л., Уиллман Г., Карпентер Т., Хансен М. Рост молоди озерного осетра, выращенной в резервуарах при трех плотностях. Н. Ам. Дж. Аквак. 1999; 61: 331–335. дои: 10.1577/1548-8454(1999)061<0331:GOJLSR>2.0.CO;2. [CrossRef] [Google Scholar]

56. Молер Дж. В., Кинг М. К., Фаррелл П. Р. Рост и выживание атлантического осетра, питающегося первыми особями, и молоди в условиях культивирования. Н. Ам. Дж. Аквак. 2000; 62: 174–183. doi: 10.1577/1548-8454(2000)062<0174:GASOFF>2.3.CO;2. [CrossRef] [Google Scholar]

57. Гюльтен К., Ферит Р., Мевлют К. Показатели роста и эффективность конверсии корма молоди сибирского осетра ( Acipenser baeri ), выращенной в бетонных дорожках. Турок. Дж. Вет. Аним. науч. 2000;4:435–442. [Академия Google]

58. Schram E., Van der Heur J.W., Kamstra A., Verdegen M.C.J. Плотность посадки — зависимый рост камбалы (Solea solea) в аквакультуре. 2006; 252:339–347. doi: 10.1016/j.aquaculture.2005.07.011. [CrossRef] [Google Scholar]

59. Tolussi C.E., Hilsdorf A.W., Canneppele D., Moreira R.G. Влияние плотности посадки на физиологические параметры и рост находящегося под угрозой исчезновения костистого вида Piabanba bryconinsignis . Аквакультура. 2010;310:221–228. doi: 10.1016/j.aquaculture.2010.10.007. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

60. Докан А., Дедиу Л., Крецу М., Могодан А. Биохимические реакции плазмы молоди гибридов Бестера, выращенных при различной плотности посадки. Аква. Аква. Консерв. Легис. 2017;10:1085–1090. [Google Scholar]

61. Колман Р., Капуста А. Кормовая характеристика и организация кормления осетровых рыб с особым акцентом на сибирского осетра. В: Уиллиот П., Ноннотт Г., Чебанов М., редакторы. Сибирский осетр (Acipenser baerii, Brandt, 1869) Том 2. Спрингер; Чам, Швейцария: 2018. стр. 75–85. [Академия Google]

62. Моммсен Т.П., Виджаян М.М., Мун Т.В. Кортизол у костистых: динамика, механизмы действия и регуляция метаболизма. Преподобный Фиш Биол. Рыбы. 1999; 9: 211–268. doi: 10.1023/A:1008924418720. [CrossRef] [Google Scholar]

63. Мазо М.М., Мазо Ф., Дональдсон Э.М. Первичные и вторичные эффекты стресса у рыб: некоторые новые данные с общим обзором. Транс. Являюсь. Рыбы. соц. 1977; 106: 201–212. doi: 10.1577/1548-8659(1977)106<201:PASEOS>2.0.CO;2. [CrossRef] [Академия Google]

64. Полакоф С., Пансерат С., Соенгас Дж.Л., Мун Т.В. Метаболизм глюкозы у рыб: обзор. Дж. Комп. Физиол. Б. 2012; 182:1015–1045. doi: 10.1007/s00360-012-0658-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

65. Marco P., McKenzie D.J., Mandich A., Bronzi P., Cataldi E., Cataudella S. Влияние условий отбора проб на показатели химического состава крови адриатического осетра Acipenser naccarii (Бонапарт, 1836 г.) J. Appl. Ихтиол. 1999; 15:73–77. doi: 10.1111/j.1439-0426.1999.tb00210.x. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

66. Li D., Liu Z., Xie C. Влияние плотности посадки на рост и концентрацию гормонов щитовидной железы и кортизола в сыворотке амурского осетра, Acipenser schrenckii . Рыбы. Физиол. Биохим. 2012; 38: 511–520. doi: 10.1007/s10695-011-9531-y. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

67. Hamlin HJ, Moore B.C. , Edwards TM, Larkin I.L.V., Boggs A., High WJ, Main K.L., Guillette L.J. Нитрат-индуцированное повышение концентрации половых стероидов в крови у сибирских самок Осетр ( Acipenser baeri ) в коммерческой аквакультуре. Аквакультура. 2008; 281:118–125. doi: 10.1016/j.aquaculture.2008.05.030. [CrossRef] [Google Scholar]

68. Белэнджер Дж.М., Сон Дж.Х., Лаугеро К.Д., Моберг Г.П., Дорошов С.И., Ланкфорд С.Е., Чех Дж.Дж. Влияние краткосрочного стресса и инъекций АКТГ на уровень кортизола в плазме у культивируемой белуги, Acipenser transmontanus . Аквакультура. 2001; 203: 165–176. doi: 10.1016/S0044-8486(01)00620-2. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

69. Семенкова Т.Б., Баюнова Л.В., Боев А.А., Дюбин В.П. Влияние стресса на уровень кортизола в сыворотке осетровых рыб в аквакультуре. Дж. Заявл. Ихтиол. 1999; 15: 270–272. doi: 10.1111/j.1439-0426.1999.tb00249.x. [CrossRef] [Google Scholar]

70. Лукас А. Физические концепции биоэнергетики. В: Лукас А. , редактор. Биоэнергетика водных животных. Тейлор и Фрэнсис; Лондон, Великобритания: 1996. 169 стр. [CrossRef] [Google Scholar]

71. Ивама Г.К., Виджаян М.М., Форсайт Р.Б., Акерман П.А. Белки теплового шока и физиологический стресс у рыб. Являюсь. Зоол. 1999;39:901–909. doi: 10.1093/icb/39.6.901. [CrossRef] [Google Scholar]

72. Wedemeyer G.A., Barton B.A., McLeay D.J. Стресс и акклиматизация. В: Шрек С.Б., Мойл П.Б., редакторы. Методы для рыбы. Биология. Американское рыболовное общество; Бетесда, Мэриленд, США: 1990. стр. 491–527. [Google Scholar]

73. Ваззана М., Каммарата М., Купер Э.Л., Парринелло Н. Стресс, связанный с ограничением свободы, у морского окуня ( Dicentrarchus labrax ) снижает цитотоксичность перитонеальных лейкоцитов. Аквакультура. 2002; 210: 231–243. doi: 10.1016/S0044-8486(01)00818-3. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

74. Пикеринг А.Д. Стресс и рыба. Академическая пресса; Нью-Йорк, штат Нью-Йорк, США: Лондон, Великобритания: 1981. с. 367. [Google Scholar]

75. Джени Г., Джени З. Применение иммуностимуляторов для модуляции неспецифических защитных механизмов у осетровых гибридов: Acipenser ruthenus × A. baerii . Дж. Заявл. Ихтиол. 2002; 18: 416–419. doi: 10.1046/j.1439-0426.2002.00405.x. [CrossRef] [Google Scholar]

76. Атаманалп М., Янык Т., Халилоолу И., Арас М.С. Изменения гематологических показателей радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ) Воздействие циперметрина. Изр. Дж. Аквак. Бамиджех. 2002; 54: 99–103. [Google Scholar]

77. Hrubec T.C., Smith S.A. Гематология рыб. В: Фельдман Б.Ф., Зинкл Дж.Г., Джейн М.К., редакторы. Ветеринарная гематология Шальма. 5-е изд. Липпинкотт Уильямс и Уилкинс; Филадельфия, Пенсильвания, США: 2000. стр. 1120–1125. [Google Scholar]

78. Фалахаткар Б., Багери М., Эфатпанах И. Влияние плотности посадки на показатели роста и биохимические показатели нового гибрида Leuciscus aspius ♀  ×  Rutilus frisii ♂ Aquac. Отчет 2019; 15: 200–207. doi: 10.1016/j.aqrep.2019.100207. [CrossRef] [Google Scholar]

79. Честер А., Гломски Дж. Т., Чайнани М. Филогенетическая одиссея эритроцитов. III. Рыба, опыт нижних позвоночных. гистол. Гистопатол. 1992; 7: 501–528. [PubMed] [Google Scholar]

80. Шено В. Иммунология у осетровых с акцентом на механизмы сибирского осетра, реакцию на стресс и стимуляцию. В: Уиллиот П., Ноннотт Г., Чебанов М., редакторы. Сибирский осетр (Acipenser baerii, Брандт, 1869 г.).) Том 2. Спрингер; Чам, Швейцария: 2018. стр. 373–402. [Google Scholar]

81. Аксакал Э., Экинджи Д., Эрдоган О., Бейдемир Ш., Алим З., Джейхун С.Б. Увеличение плотности посадки вызывает ингибирование метаболических антиоксидантных ферментов и повышает уровень мРНК белка теплового шока 70 у радужной форели. Livest. науч. 2011; 141:69–75. doi: 10.1016/j.livsci.2011.07.006. [CrossRef] [Google Scholar]

82. Караташ Т., Коджаман Э.М. Сравнение активности параоксоназы, уровней малонового диальдегида и липопротеинов высокой плотности у культивируемых нормальных и белых радужных форелей, выращенных в одинаковых условиях. Кафкас унив. Вет. Фак. Дерг. 2012;18:87–90. doi: 10.9775/kvfd.2011.4971. [CrossRef] [Google Scholar]

83. Wang Y., Xu G., Nie Z., Li Q., ​​Shao N., Xu P. Влияние плотности посадки на рост, биохимические параметры сыворотки, активность пищеварительных ферментов и антиоксиданты Статус большеротого окуня, Micropterus salmoides . пак. Дж. Зул. 2019;51:1509–1517. doi: 10.17582/journal.pjz/2019.51.4.1509.1517. [CrossRef] [Google Scholar]

84. Андраде Т., Афонсо А., Перес-Хименес А., Олива-Телес А., де ласЭрас В., Мансера Х.М., Серрадейро Р., Костас Б. Оценка различных чулок Плотность сенегальской подошвы ( Solea senegalensis ) Ферма: влияние на рост, параметры гуморального иммунитета и окислительный статус. Аквакультура. 2015; 438:6–11. doi: 10.1016/j.aquaculture.2014.12.034. [CrossRef] [Google Scholar]

85. Liu J., Zhang W., Du X., Jiang J., Wang C., Wang X., Zhang Q., He Y. Молекулярная характеристика и функциональный анализ GATA4 в подошве языка ( Cynoglossus semilaevis ) Comp. Биохим. Физиол. Б. Биохим. Мол. биол. 2016; 193:1–8. doi: 10.1016/j.cbpb.2015.12.001. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

86. Coeurdacier J.L., Dutto G., Gasset E., Blancheton J.-P. Является ли общий белок сыворотки хорошим показателем благополучия выращенного морского окуня (Dicentrarchus labrax)? Аква. Живой ресурс. 2011; 24:121–127. doi: 10.1051/alr/2011130. [CrossRef] [Google Scholar]

87. Надери М., Кейваншокох С., Салати А.П., Гаеди А. Влияние хронической высокой плотности посадки на протеом печени радужной форели (Oncorhynchus mykiss) Fish. Физиол. Биохим. 2017;43:1373–1385. doi: 10.1007/s10695-017-0378-8. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

88. Мунтяну Г., Богату Д. Тратат об ихтиопатологии. Эксельсиор Арт; Тимишоара, Румыния: 2003. 27 стр. [Google Scholar]

89. Лезерленд Дж.Ф., Чо С.Ю. Влияние плотности выращивания на активность щитовидной железы и межпочечных желез, а также уровни метаболитов в плазме и печени у радужной форели, Salmo gairdneri Richardson.